Неинвазивные методы оценки воспаления в бронхах при бронхиальной астме и хронической обструктивной болезни легких

• Автор: Боярко, Валентина Владимировна
• Шифр специальности: 14.00.43
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2006
• Место защиты: Томск
• Количество страниц: 117 с. : 13 ил.

Список сокращений

СОДЕРЖАНИЕ

Введение
Глава 1. Обзор литературы
1.1. Исследование индуцированной мокроты - неинвазивный метод мониторинга воспаления при БА и ХОБЛ
1.1.1. Цитологический состав индуцированной мокроты у здоровых, больных Б А и ХОБЛ
1.1.2. Изменения цитологического состава индуцированной мокроты при Б А и ХОБЛ на фоне лечения
1.1.3. Сопоставимость методов индуцированной мокроты, брашби-опсий, бронхоальвеолярного лаважа
1.2. Окись азота - маркер воспаления при заболеваниях дыхательных путей
1.2.1. История исследования и биосинтез оксида азота
1.2.2. Биохимия синтезаN0 и его источники в легких человека
1.2.3. N0 как маркер активности воспаления воздухоносных путей при бронхиальной астме
1.2.4. Изменения выдыхаемого N0 при ХОБЛ
1.2.5. Методы оценки активности синтеза N0 в легких
Глава 2. Материал и методы исследования
2.1. Материал исследования
2.2. Методы исследования
2.2.1. Клинико-функциональная оценка больных
2.2.2. Индуцирование мокроты и цитологическое исследование мазков мокроты
2.2.3. Бронхоальвеолярный лаваж и цитологическое исследование бронхиальных смывов

2.2.4. Определение N0 в индуцированной мокроте, бронхиальных смывах, конденсате паров выдыхаемого воздуха спектрофотометрически с реактивом Грисса
2.2.5. Статистическая обработка данных
Глава 3. Результаты собственных исследований
3.1. Сравнение цитологического состава индуцированной мокроты и бронхиальных смывов у больных БА и ХОБЛ
3.1.1. Цитологический состав индуцированной мокроты у больных БА, взаимосвязи между разными показателями клеточного состава
3.1.2. Цитологический состав индуцированной мокроты у больных ХОБЛ, взаимосвязи между разными его составляющими
3.1.3. Сравнение цитологического состава индуцированной мокроты и бронхиальных смывов у больных БА и ХОБЛ
3.2. Изменения цитологического состава индуцированной мокроты у больных БА и ХОБЛ на фоне лечения
3.2.1. Изменения цитограмм индуцированной мокроты и клиникофункционального состояния на фоне лечения у больных БА
3.2.2. Изменения цитограмм индуцированной мокроты и клиникофункционального состояния на фоне лечения у больных ХОБЛ
3.3. Сравнение содержания метаболитов N0 в конденсате паров выдыхаемого воздуха, индуцированной мокроте, бронхоальвеолярных смывах у здоровых и больных БА и ХОБЛ
3.3.1. Содержание метаболитов N0 в конденсате паров выдыхаемого воздуха у больных БА
3.3.2. Содержание метаболитов N0 в конденсате паров выдыхаемого воздуха у больных ХОБЛ по сравнению с БА
3.3.3. Сравнение содержания метаболитов N0 в конденсате паров выдыхаемого воздуха, индуцированной мокроте и бронхоальвнолярных смывах у больных БА и ХОБЛ

3.3.4. Содержание метаболитов N0 в конденсате паров выдыхаемого воздуха у больных БА и ХОБЛ на фоне медикаментозной терапии
3.4. Корреляционные связи между клеточным составом индуцированной мокроты, бронхоальвеолярных смывов и уровнем N0 в конденсате паров выдыхаемого воздуха, индуцированной мокроте и лаважной жидкости
3.4.1. Взаимосвязи между клеточным составом индуцированной мокроты и бронхоальвеолярных смывов и уровнем метаболитов N0 в конденсате паров выдыхаемого воздуха, индуцированной мокроте, жидкости бронхоальвеолярного лаважа при БА
3.4.2. Взаимосвязи между клеточным составом индуцированной мокроты и бронхоальвеолярных смывов и уровнем метаболитов N0 в конденсате паров выдыхаемого воздуха, индуцированной мокроте, жидкости бронхоальвеолярного лаважа при ХОБЛ
3.5. Значимость цитологических показателей индуцированной мокроты и бронхоальвеолярных смывов и содержания метаболитов в конденсате паров выдыхаемого воздуха, индуцированной мокроте и бронхоальвеолярных смывах для дифференциальной диагностики БА и ХОБЛ
Глава 4. Обсуждение результатов исследования
Выводы
Практические рекомендации
Список литературы

вую трубку с внутренним диаметром 5 мм, помещенную в стеклянную пробирку, опущенную в стакан со льдом (рис.1). У-образная петля была необходима, чтобы предотвратить попадание в конденсат слюны, которая, как известно содержит большое количество нитритов. Данный способ позволяет получить необходимые для анализа 200 мкл дыхательного конденсата в течение 10-15 мин.
пробирка для сбора конденсата
стакан со льдом
у-образная полипропиленовая трубка со стеклянным наконечником
Рис. 1. Схематическое изображение устройства, использованного для сбора конденсата паров выдыхаемого воздуха
Материалом для исследования в ИМ и жидкости БАЛ служил супернатант, полученный после центрифугирования мокроты и брониальных смывов при 4500 об./мин.
Спектрофотометрический метод определения нитритов в водных растворах был выполнен по стандартной методике основанной на цветной реакции с реактивом Грисса [16,33]. Состав реактива Грисса: 1,25 г сульфанило-вой кислоты; 2,5 г 1-нафтиламина в 1000 мл 30% уксусной кислоты [16]. Раствор готовился всякий раз перед применением. Измерение проводили на микропланшетном спектрофотометре при 540 нм. Количество метаболитов N0 в КПВВ, ИМ и жидкости БАЛ выражали в мкмоль/л.