Нарушение обмена гликозаминогликанов при неврологической патологии и его коррекция церулоплазмином

• Автор: Абрамова, Ирина Эдуардовна
• Шифр специальности: 03.00.04
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 1999
• Место защиты: Уфа
• Количество страниц: 117 с. : ил

Список сокращений
АТФ - аденозинтрифосфорная кислота
ГАГ - гликозаминогликаны
Геп - гепарин
ГК - гиалуроновая кислота
ГС - гепарансульфат
дс - дерматансульфат
КС - кератансульфат
НАД+ - никотинамидадениндинуклеотид
НАДН+ Н+ - восстановленный никотинамидадениндинуклеотид НАДФН+Н+- восстановленный никотинамидадениндинуклеотидфосфат ПГ -протеогликаны
ПНЗГС последствия нейроинфекционных заболеваний с гипотамала-
мическим синдромом СЗГМ сосудистые заболевания головного мозга
УДФ уридиндифосфорная кислота
УТФ -уридинтрифосфорная кислота
УК -уроновые кислоты
ХС -хондроитинсульфат
ЦП -церулоплазмин
ЭАЭ - экспериментальный аллергический энцефаломиелит
ЭПР -эндоплазматический ретикулум

Содержание
ВВЕДЕНИЕ
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Структура и функции протеогликанов в норме и при патологии
1.1.1. Структура и свойства гликозаминогликанов
1.1.2. Метаболизм протеогликанов
1.1.3. Функции протеогликанов
1.1.4. Содержание и функциональная роль гликозаминогликанов в нервной ткани в норме и при патологии
1.1.5. Изменение содержания и состава гликозаминогликанов при различных патологических состояниях
1.2. Церулоплазмин и возможности его применения при лечении неврологических заболеваний
2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
2.1. Объекты исследования
2.2. Разделение гликозаминогликанов на фракции в биологических жидкостях
2.3. Определение содержания кислых гликозаминогликанов по
методу Шараева
2.4. Определение содержания гликозаминогликанов в печени лабораторных животных
2.5. Определение содержания цитохромов Ь5 и Р-450 в печени лабораторных животных
2.5.1. Определение содержания цитохрома Ь5
2.5.2.Определение содержания цитохрома Р-450
2.6. Метод быстрой окраски миелиновых волокон по КгШъау
2.7. Гистохимическое выявление кислых гликозаминогликанов методом Хейла
2.8. Статистическая обработка полученных результатов 3

3. ИЗМЕНЕНИЕ СОДЕРЖАНИЯ И СОСТАВА ГЛИГОЗАМИНОГЛИКАНОВ ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ АЛЛЕРГИЧЕСКОМ ЭНЦЕФАЛОМИЕЛИТЕ
3.1. Характеристика неврологических нарушений у животных при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите
3.2. Морфологические и гистохимические изменения в центральной нервной системе и печени крыс при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите
3.2.1. Морфологические изменения миелиновых волокон центральной нервной системы крыс при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите
3.2.2. Гистохимические изменения миелиновых волокон центральной нервной системы крыс при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите
3.2.3. Морфо-гистохимические изменения печени крыс при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите
3.3. Динамика физиологических показателей крыс при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите
3.4. Изучение содержания гликозаминогликанов в головном и спинном мозге крыс при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите
3.5. Изменение содержания гликозаминогликанов в печени крыс при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите
3.6. Изменение содержания гликозаминогликанов в сыворотке крови крыс при экспериментальном аллергическом энцефаломиелите
4. ИЗМЕНЕНИЕ СОДЕРЖАНИЯ И СОСТАВА
ГЛИКОЗАМИГЛИКАНОВ У БОЛЬНЫХ НЕВРОЛОГИЧЕСКИМИ ЗАБОЛЕВАНИЯМИ
4.1. Изменения содержания и состава гликозаминогликанов в сыворотке крови больных неврологическими заболеваниями

2.5.0пределение содержания цитохромов Ь5 и Р-450 в печени лабораторных животных [53]
Определение содержания микросомальных цитохромов Ь5 и Р-450 проводили в постмитохондриальной фракции печени.
Реактивы: 1.15% КС1.
Подготовка органов. Крыс забивали декапитацией, и быстро извлекали печень. Отмывали ее от крови охлажденным 1,15% раствором КС1 до светло-желтого цвета. После этого печень отжимали на марлевой салфетке, помещали на стоящую во льду чашку Петри и измельчали ножницами.
Гомогенизация ткани. Проводилась аналогично методу, описанному в п.2.4 с соответствующей средой выделения (1,15% р-р КС1).
Полученный гомогенат центрифугировали на центрифуге при 16000-18000 g в течение 15 мин, при температуре 0 °С. После этого надосадочную по-стмитохондриальную фракцию аккуратно отбирали шприцом на 5 мл в центрифужные пробирки и производили определение содержания цитохромов Ь5 и Р-450.
2.5.1 .Определение содержания цитохрома Ь5 в печени крыс [53]
Определение содержания цитохрома Ь5 основано на измерении разницы в поглощении окисленной и восстановленной форм гемопротеида.
Реактивы: 200 мМ трис-HCI буфер (pH 7,4).
Ход определения: Измерение содержания цитохрома Ь5 проводили на спектрофотометре “SPECORD-M40” (по двухлучевой схеме). Использовали кюветы шириной 10 мм. В каждую из кювет вносили по 3 мл суспензии микро-сом в буфере. Запись проводили в диапазоне волн 400-500 нм. В правую кювету добавляли несколько кристаллов дитионита и записывали дифференциальный спектр цитохрома Ь5. При этом минимум поглощения имел место при 408 нм, а максимум - 428 нм. Разница поглощения между 408 и 428 нм (А ОП408-428) слу-