Особенности углеводно-энергетического обмена костных трансплантатов при замещении дефектов нижней челюсти в эксперименте

• Автор: Чудинов, Александр Николаевич
• Шифр специальности: 03.00.04
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2006
• Место защиты: Махачкала
• Количество страниц: 123 с. : ил.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ СОКРАЩЕНИЙ
ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Особенности строения и состава костной ткани
1.2. Биохимические механизмы минерализации костей
1.3. Регуляция минерализации костной ткани витаминами и гормонами
1.4. Механизм перестройки костной ткани при трансплантации и факторы, влияющие на этот процесс
1.5. Биохимические изменения в костных трансплантатах в различные сроки после их пересадки
ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Техника взятия костных трансплантатов и проведение операции их пересадки. Рентгенологические и морфологические исследования
2.2. Методы биохимических исследований
2.2.1. Определение содержания глюкозы
2.2.2. Определение содержания гликогена
2.2.3. Определение содержания адениловых нуклеотидов
2.2.4. Определение содержания креатинфосфата, неорганического фосфата и молочной кислоты
2.2.5. Определение активности амилазы
2.2.6. Определение активности фосфорилазы
2.2.7. Определение активности гексокиназы
2.3. Статистическая обработка результатов исследований
ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
3.1. Изменения в трансплантате губчатой кости в динамике после пересадки
3.1.1. Рентгенологические изменения в трансплантате губчатой кости
3.1.2. Морфологические изменения в трансплантате губчатой кости
3.1.3. Биохимические показатели в трансплантате из губчатой
костной ткани в различные сроки после пересадки
3.1.3.1. Изменения содержания гликогена в трансплантате из губчатой кости
3.1.3.2. Изменения содержания глюкозы в трансплантате из губчатой
кости
3.1.3.3. Исследование активности фосфорилазы в костных трансплантатах
3.1.3.4. Исследование активности амилазы в трансплантате губчатой кости
3.1.3.5. Изменения активности гексокиназы в трансплантате губчатой кости
3.1.3.6. Определение содержания лактата в губчатом костном трансплантате
в норме и динамике после трансплантации
3.1.3.7. Изменения содержания нуклеотидов и креатинфосфата
в трансплантате губчатой кости в динамике после пересадки
3.1.3.8. Изменения содержание неорганического фосфата в губчатом костном трансплантате в динамике после трансплантации
3.2. Изменения в трансплантате компактной костной ткани в динамике
после пересадки
3.2.1. Рентгенологические изменения в трансплантате компактной кости
3.2.2. Морфологические изменения в трансплантате компактной кости
3.2.3. Изменения биохимических показателей в трансплантате
компактной костной ткани в динамике после операции пересадки
3.2.3.1. Изменения содержания гликогена и активности амилазы
3.2.3.2. Изменения содержания глюкозы и активности гексокиназы
3.2.3.3. Изменения содержания молочной кислоты
3.2.3.4. Изменения содержания креатинфосфата
3.2.3.5. Изменения содержания неорганического фосфата в динамике
после пересадки
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
ЛИТЕРАТУРА

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ СОКРАЩЕНИЙ
АТФ - аденозинтрифосфорная кислота
АДФ - аденозиндифосфорная кислота
АМФ - аденозинмонофосфорная кислота
АТФ-аза - аденозинтрифосфатаза
цАМФ - циклический АМФ
НАД - никотинамидадениндинуклеотид
НАДФ - никотинамидадениндинуклеотидфосфат
Рн, (НФ) - неорганический фосфат
КФ - креатинфосфат
ЛДГ - лактатдегидрогеназа
ТХУ - трихлоруксусная кислота
ФАД - флавинадениндинуклеотид
ФМН - флавинмононуклеотид
СТГ - соматотропный гормон
КоА - коэнзим А
ТПФ - тиаминпирофосфат
УТФ - уридинтрифосфорная кислота
УТФ-аза - уридинтрифосфатаза
г - Коэффициент корреляции

2.2.6. Определение активности фосфорилазы
(Фосфорилаза, КФ 2.4.1.1) 1,4-глюкан: ортофосфат-глюкозилтрансфераза).
Активность фосфорилазы определяли в безбелковом фильтрате по убыли неорганического фосфата (Скулачев, 1962). Измельченную ткань гомогенезировали в холодном (до +4°С) растворе 0,05 М №Б с расчетом 1 г ткани в 5 мл реактива (0,05 М МаБ). В инкубационную смесь брали 1 мл 4%-го крахмала, 0,5 мл 0,002 М АМФ, 9 мл 0,1 моль/л фосфатного буфера с pH
7,2, 1 мл гомогената. В параллельной пробе брали все реактивы, кроме фосфатного буфера. Перемешивали и инкубировали при 37°С в течение 60 минут. По окончании инкубации ферментативную реакцию приостанавливали добавлением 5 мл 10%-го раствора ТХУ, а затем в параллельную пробу вносили 2 мл 0,1 моль/л фосфатного буфера. После отделения осадка центрифугированием в фильтрате определяли убыль неорганического фосфора (Скулачев, 1962). Фосфорилазную активность выражали по количеству связываемого при расщеплении крахмала неорганического фосфора в мкг на 1 г ткани и на 1 мг белка за 60 мин инкубации при 37°С. Белок в пробах определяли по Лоури и микробиуретовым методом (Кочетов, 1980).