Роль аквапоринов в поддержании прозрачности хрусталика (экспериментальное исследование)

• Автор: Сумеркина, Вероника Андреевна
• Шифр специальности: 14.03.03
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2010
• Место защиты: Челябинск
• Количество страниц: 121 с. : 10 ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
ВВЕДЕНИЕ
Глава 1. ОНТОГЕНЕТИЧЕСКИЙ АСПЕКТ СТАНОВЛЕНИЯ СИСТЕМЫ
ЦИРКУЛЯЦИИ ЖИДКОСТИ В ХРУСТАЛИКЕ. ВОЗМОЖНЫЕ
МЕХАНИЗМЫ РЕГУЛЯЦИИ ВОДНОГО ГОМЕОСТАЗА
ХРУСТАЛИКА (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
1.1. Этапы эмбрионального развития хрусталика
1.2. Структурные компартменты хрусталика и их роль в поддержании прозрачности
1.3. Роль циркуляторной системы хрусталика в поддержании его прозрачности
1.4. Перспективные направления профилактики и лечения катаракты
Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Экспериментальное моделирование помутнения хрусталика in vitro
2.2. Получение экстрактов органов и тканей (экстракта гипофиза крысы, цилиарного тела кролика, глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона)
2.3. Определение содержания белка в экстракте глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона
2.4. Определение содержания белковых фракций в экстракте глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона
2.5. Определение содержания молекул средней массы в экстракте глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона

2.6. Определение значения pH экстракта глаза четырнадцатидневного
куриного эмбриона
2.7. Определение желатиназной активности тканей глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона
2.8. Определение хемоаттрактантной активности экстракта глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона
2.9. Иммуногистохимическое исследование хрусталика четырнадцатидневного куриного эмбриона
2.10. Статистическая обработка результатов исследования
Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
3.1. Факторы, оказывающие влияние на прозрачность хрусталика в условиях in vitro
3.2. Влияние биологически активных веществ на водный гомеостаз и прозрачность хрусталика в условиях in vitro
3.2.1. Влияние вазопрессина на водный гомеостаз и прозрачность хрусталика в условиях in vitro
3.2.2. Влияние компонентов ренин-ангиотензиновой системы на водный гомеостаз и прозрачность хрусталика в условиях in vitro
3.2.3. Влияние эстрогенов на водный гомеостаз и прозрачность хрусталика в условиях in
vitro
3.3. Источник биологически активных регуляторов водного гомеостаза хрусталика в структуре глаза
3.4. Влияние ацетилсалициловой кислоты на прозрачность хрусталика
3.5. Влияние экстракта глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона на прозрачность хрусталика в условиях in vitro

3.6. Биохимические и иммунологические свойства экстракта глаза
четырнадцатидневного куриного эмбриона
3.6.1. Содержание белка в экстракте глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона
3.6.2. Фракционный состав белков в экстракте глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона
3.6.3. Содержание молекул средней массы в экстракте глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона
3.6.4. Значение pH экстракта глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона
3.6.5. Желатиназная активность тканей глаза четырнадцатидневного куриного
эмбриона
3.6.6. Хемоаттрактантная активность экстракта глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона
3.6.7. Экспрессия УЕОБ в структурах глаза четырнадцатидневного куриного эмбриона
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ СОБСТВЕННЫХ
ИССЛЕДОВАНИЙ
ВЫВОДЫ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

Питание хрусталика осуществляется путём диффузии компонентов из внутриглазной жидкости и стекловидного тела. Однако простая диффузия не в состоянии обеспечить метаболические потребности ядра хрусталика. Для объяснения этого обстоятельства была предложена система циркуляции жидкости, которая характеризуется неравномерным распределением ионных насосов, переносчиков, каналов, что обеспечивает поступление питательных веществ, воды, электролитов внутрь хрусталика и выведение продуктов обмена из него.
Известно, что для поддержания прозрачности хрусталика необходим баланс воды между цитоплазмой и внеклеточным пространством волокнистых клеток. Большое значение для нормального функционирования структур хрусталика имеет система циркуляции жидкости между эпителием капсулы и кристаллинами ядра. На молекулярном уровне регуляцию эпителиального водного транспорта обеспечивают аквапорины - водные каналы, представляющие собой белки плазматических мембран. В хрусталике определяется аквапорин AQPO (MIP26 — главный интегральный протеин мембран) на волокнистых клетках хрусталика и AQP1 (СШР28 -каналформирующий интегральный протеин) на эпителиальных клетках переднего полюса хрусталика [86, 122, 124, 154]. Доказано, что нарушение структуры аквапоринов ведёт к помутнению хрусталика. Так, при мутации генов, кодирующих синтез AQPO, развивается врождённая катаракта [81, 94]. В экспериментах на мышах в условиях in vivo и in vitro было установлено, что дефицит AQP1 не вызывает изменения морфологической структуры хрусталика и не влияет на его прозрачность, но при воздействии патологических факторов у таких животных помутнение развивается быстрее по сравнению с контрольной группой. Исследователи связывают предрасположенность животных, не экспрессирующих AQP1 в эпителии хрусталика, к формированию катаракты с нарушением водного гомеостаза хрусталика. Установлено,-что