Применение пробиотика из штаммов бактерий Bacillus subtilis ТНП-3 и Bacillus subtilis ТНП-5 в птицеводстве

• Автор: Степанова, Анна Михайловна
• Шифр специальности: 06.02.02
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2011
• Место защиты: Якутск
• Количество страниц: 126 с. : ил.

Содержание
ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1. 1. Микробиоценоз кишечника птиц

1.2. Пробиотики в птицеводстве

1.2.1. Пробиотики на основе лактобактерий

1.2.2. Пробиотики на основе бифидобактерий

1.2.3. Пробиотики на основе бактерий рода Bacillus

1.3. Обработка инкубационных яиц

1.4. Заключение по литературному обзору

ГЛАВА 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Материалы и методы исследований
2.2.Эпизоотологические данные ОАО «Якутская птицефабрика»
2.3. Разработка технологии применения пробиотика «Норд-Бакт» в птицеводстве
2.3.1. Изучение применения пробиотика «Норд-Бакт» для обработки инкубационных яиц
2.3.2. Использование пробиотика «Норд-Бакт» при выращивании молодняка птиц
2.3.2.1. Изучение динамики кишечной микрофлоры молодняка птицы при применении пробиотика «Норд-Бакт»
2.3.3. Изучение применения пробиотика «Норд-Бакт» при антибиотикогерапии
2.3.4. Результаты производственных испытаний пробиотика «Норд-Бакт» в промышленном птицеводстве
2.3.4.1. Производственные испытания пробиотика «Норд-Бакт» при выращивании молодняка птицы

2.3.4.2. Производственные испытания пробиотика «Норд-Бакт» в лечении дисбактериоза кишечника молодняка птиц
2.3.4.3. Производственные испытания раннего применения пробиотика «Норд-Бакт» начиная с эмбрионального периода для сохранности молодняка

2.3.4.3.1. Экономическая эффективность применения пробиотика «Норд-Бакт»
2.3.4.4. Производственные испытания пробиотика «Норд-Бакт» на курах-
несушках
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
ВЫВОДЫ
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЕ

Введение
Птицеводство — это скороспелая отрасль животноводства с интенсивными методами производства, которая обеспечивает население диетическими продуктами питания: мясом и яйцом. В промышленном птицеводстве для профилактики заболеваний, сохранности птицы, повышения их продуктивности проводят вакцинации, дегельминтизации, часто применяют антибиотики и другие химиопрепараты. Большинство из них оказывает отрицательное влияние на организм птицы, часто вызывая дисбактериозы. Применение антибиотиков существенно нарушает микробаланс в кишечнике молодняка животных и птицы. После их отмены процесс восстановления микрофлоры до оптимального ее состояния происходит в течение нескольких дней. В этот период у птицы нарушается не только нормальный физиологический ритм пищеварения, но и снижается резистентность организма и продуктивность. Бесконтрольное применение антибиотиков, которые медленно выводятся из организма, приводит к их накоплению, что часто значительно снижает качество животноводческой продукции (О. Нигоев, с соавт., 2007; F. Brzoska, S. Buluchevskij, G.S. Steoka,
В. Slivinski, 2007). К тому же, с широким применением антибиотиков, возникла серьезная проблема борьбы с резистентными формами патогенных микроорганизмов при лечении животных (И.П. Салеева, 2006; А.Б. Иванова, Г.А. Ноздрин, 2007; А.Н. Панин, Р.Т. Маннапова, JI.3. Батрединова, 2009; М.А. Andrade, 2008; W. Awad, К. Chareeb, S. Abdel-Raheem, J. Bohm, 2009).
Актуальность темы. С целью обеспечения экологической безопасности продуктов питания в странах Европейского союза запрещено применение антибиотиков при выращивании сельскохозяйственных животных и получении продукции животноводства. Поэтому во всем мире, в том числе и России, идет активная разработка и внедрение безопасных, эффективных пробиотических препаратов, как альтернативы антибиотикам.

физиологическом растворе. Анализ микрофлоры на скорлупе и в содержимом яйца проводили одновременно. С каждой пробы делали смывы с поверхности яиц увлажненным тампоном. Для микробиологического исследования содержимого яиц поверхность скорлупы обмывали щеточкой теплой мыльной водой, затем погружали в этанол на 10 минут и обжигали на пламени горелки. На остром конце яйца делали отверстие с соблюдением асептики. Содержимые яиц, помещали в колбу со стеклянными шариками и гомогенезировали до однородной массы, подогревали на водяной бане при 20°С. Затем 1 мл яичной массы смешивали с 9 мл физраствора, потом готовили последующие разведения.
Для определения количества МАФАнМ (мезофильных аэробных и факультативно-анаэробных микроорганизмов) использовали мясо-пептонный агар (МПА). Для выделения и количественного учета бактерий использовали следующие среды: азидная среда - для выделения и учета энтерококков, среда Эндо - для выделения и дифференциации энтеробактерий, бифидумереда - для количественного учета бифидобактерий, лактобакагар - для определения молочнокислых микроорганизмов, среда Байрд-Паркера - для выделения патогенных и непатогенных стафилококков, среда Чапека - для выделения микроскопических грибов, МПА (после прогрева до 85°С в течение 15 минут) - для спорообразующих аэробных бактерий, скошенный МПА -для выделения протея, среда с бромтимоловым синим для выделения иерсиний, магниевая среда для накопления патогенных энтеробактерий, среда Олькеницкого - трехсахарный агар с мочевиной для дифференциации кишечных бактерий.
Подсчет выросших колоний осуществляли в счетчике колоний. Учет результатов посевов проводили через 18, 24, 48 ч для бактерий и 5 дней - для грибов. Количество микроорганизмов определяли в колониеобразующих единицах (КОЕ) в 1 г.