Влияние иммуномодуляторов на естественную резистентность и специфическую устойчивость цыплят в эмбриональный и постэмбриональный периоды

• Автор: Якубовская, Марина Юрьевна
• Шифр специальности: 06.02.02
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2011
• Место защиты: Кострома
• Количество страниц: 157 с. : ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ
ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Иммуномодуляторы

1.1.1. Терминология; Основные принципы определения

1.1.2. Классификация*

1.2. Иммуномодуляторы в ветеринарии

1.2.1. Иммуномодуляторы в птицеводстве

1.2.1.1. Применение иммуномодуляторов «для стимуляции-эмбриогенеза

1.2.1.2. Применение иммуномодуляторов .для стимуляции

постэмбрионального развития

1.3. Влияние иммуномодуляторов на естественную резистентность и специфическую устойчивость
1.3.1. Методы повышения естественной резистентности птицы
1.3.2. Применение иммуномодуляторов для повышения эффективности вакцинопрофилактики
2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Материалы и методы
2.2. Результаты собственных исследований
2.2.1. Краткий анализ эпизоотической ситуации и системы ветеринарных обработок в хозяйстве
2.2.2. Влияние рибава и тимогена на эмбриональное развитие цыплят
2.2.3. Влияние рибава и тимогена на постэмбриональное развитие молодняка кур
2.2.3.1. Влияние рибава и тимогена на рост и развитие молодняка..
2.2.3.2. Биохимические показатели крови цыплят, обработанных рибавом и тимогеном
2.2.4. Влияние рибава и тимогена на показатели естественной резистентности и специфической устойчивости яичных цыплят
2.2.'4.1. Динамика гематологических показателей
2.2.4.2. Динамика циркулирующих иммунных комплексов
2.2.4.3. Динамика бактерицидной и лизоцимной активности сыворотки крови цыплят
2.2.4.4. Динамика Т- и В-ли'мфоцитов
2.2.4.5. Влияние иммуномодуляторов на антителообразование против
ньюкаслской болезни
ОБСУЖДЕНИЕ
ВЫВОДЫ
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЕ
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
АГ — антигемагглютинины
АлАТ — аланинаминотрасфераза
АсАТ — аспартатаминотрансфераза
АТ — антитела
Б — базофилы
В (ЕАС-РОК) — В-лимфоциты
БАСК — бактерицидная активность сыворотки крови
БМ —болезнь Марека
Етр- и — теофиллинрезистентные и теофиллинчувствительные
Етч-РОК эритроцит-розеткообразующие клетки
ИББ — инфекционная бурсальная болезнь
ИБК — инфекционный бронхит кур
ИД — иммунодефицит
ИМ — иммуномодулятор (ы)
ИС — иммуностимулятор (ы)
КАП — комплекс антибактериальных препаратов
Кд —- коэффициент дисперсности
Л — лейкоциты
ЛАСК — лнзоцимная активность сыворотки крови
Лф — лимфоциты
М — моноциты
НБ — ньюкаслская болезнь
ПЭ — псевдоэозинофилы
РТГА — реакция торможения гемагглютинации
ССЯ-76 — синдром снижения яйценоскости-
Т (Е-РОК) — Т-лимфоциты
Тх (Етр-РОК) — Тх-хелперы
Тц (Етч-РОК) — Тц-цитотоксические
ЦИК — циркулирующие иммунные комплексы
Э — эозинофилы
Эр — эритроциты
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность темы. Интенсивные технологии, на которых базируется современное птицеводство нашей страны, в значительной степени обуславливают снижение естественной, резистентности и специфической устойчивости птиц [74, 145, 58, 20, 176, 162]. Существующую неоднозначность количественных и качественных параметров иммунных реакций, властности, при вакцинации птицы, многие исследователи связывают с факторами техногенного характера [209,257, 59].
Это в значительной степени сказывается на экономических показателях производства и затрудняет работу, направленную на профилактику и ликвидацию болезней, особенно инфекционной этиологии. Применение традиционных средств и методов не всегда ведет к ощутимому результату. Поэтому в последние годы резко возрос интерес к использованию иммунотропных препаратов, способствующих коррекции иммунологических параметров, усилению гуморальных факторов естественной резистентности птицы, повышению эффективности специфической профилактики [218, 40, 41. 42, 43, 44, 46, 81,117].
Сведения о возможности их применения в разные периоды онтогенеза птицы для стимуляции эмбрионального развития, для обработки цыплят в выводном шкафу перед выемкой, на ранних этапах выращивания молодняка — для повышения эффективности вакцинации, снижения заболеваемости, увеличения сохранности и продуктивности отражены в публикациях многих авторов [119, 259, 227, 125, 143, 15, 37, 154, 242, 52, 78, 316].
Однако в большинстве случаев, исследования выполнены на незначительном поголовье, преимущественно цыплятах-бройлерах. Они отражали результаты опытов, полученных лишь на отдельных этапах технологического процесса, а не охватывали весь цикл получения и выращивания молодняка. Кроме этого они не решали вопросов о месте и времени использования иммуномодуляторов (ИМ) в системе напряженной схемы плановых вакцинаций против основных инфекционных болезней птицы — ньюкаслской болезни

от света месте, при температуре не выше +20 С0. Производитель — ЗАО «Пептос», ФГУП НПО «Микроген» М3 РФ (г. Москва).
Исследования включали несколько этапов:
первый — определение наиболее оптимальные концентрации и схемы применения рибава и тимогена для обработки инкубационных яиц и изучить их влияние на эмбриональное развитие цыплят;
второй— определение эффективность действия иммуномодуляторов на рост и развитие молодняка птицы;
третий — изучение влияния рибава и тимогена на гематологические и биохимические показатели крови цыплят;
четвертый —• изучение клеточных и гуморальных факторов иммунитета у цыплят после применения иммуномодуляторов;
пятый— определение влияние рибава и тимогена на эффективность вакцинации молодняка против ньюкаслской болезни;
шестой —• внедрение в производство оптимальных схем обработок молодняка кур яичного направления в-эмбриональный и постэмбриональный периоды;
Стимулирующее действие препаратов на эмбриональное развитие цыплят определяли по выводу молодняка и выводимости яиц, а эффективность обработки цыплят в суточном возрасте по сохранности поголовья путем ежедневного подсчета падежа и приростам живой массы при индивидуальном взвешивании по 90 голов из каждой группы в 1-, 19-, 42-, 55- и 110-дневном возрасте.
Критерием оценки состояния птицы служили морфологические, биохимические и иммунологические показатели. Кровь для исследований в суточном возрасте получали методом декапитации, в последующем — из крыловой вены в пробирки с гепарином из расчета 20-25 МЕ/см3. Лимфоциты выделяли в градиенте плотности фиколл-верографина методом центрифугирования.