Антимикробная активность и лечебная эффективность норфлоксацина при экспериментальном колибактериозе и сальмонеллезе птиц

• Автор: Маханёв, Виталий Владимирович
• Шифр специальности: 06.02.02
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2012
• Место защиты: Белгород
• Количество страниц: 88 с.

ОГЛАВЛЕНИЕ
1. ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
2Л. Характеристика норфлоксацина
2.2. Антимикробная терапия колибактериоза птиц
2.3. Антимикробная терапия сальмонеллеза птиц
3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
4. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
4.1. Минимальная подавляющая концентрация норфлоксацина
в отношении различных видов микроорганизмов, выделенных от животных
4.2. Чувствительность микроорганизмов, выделенных от
животных, к норфлоксацину
4.3. Острая токсичность норфлоксацина для белых мышей
4.4. Острая токсичность норфлоксацина для цыплят
4.5. Распределение норфлоксацина в организме кур
4.6. Определение сроков выведения остаточных количеств
норфлоксацина из организма кур
4.7. Изучение химиотерапевтический эффективности
норфлоксацина на моделях экспериментальных
инфекций лабораторных животных
4.7.1. Терапевтическая эффективность норфлоксацина при экспериментальном колибактериозе белых мышей
4.7.2. Профилактическая эффективность норфлоксацина при экспериментальном колибактериозе белых мышей
4.7.3. Сравнительная эффективность норфлоксацина и энрофлоксацина при экспериментальном колибактериозе
белых мышей
4.7.4. Терапевтическая эффективность норфлоксацина при
экспериментальном сальмонеллезе белых мышей
4.7.5. Профилактическая эффективность норфлоксацина при
экспериментальном сальмонеллезе белых мышей
4.8. Изучение химиотерапевтический эффективности норфлоксацина на моделях экспериментальных
инфекций цыплят
4.8.1 Терапевтическая эффективность норфлоксацина при экспериментальном колибактериозе цыплят
4.8.2. Сравнительная эффективность норфлоксацина и гентамицина при экспериментальном колибактериозе цыплят
4.8.3. Терапевтическая эффективность норфлоксацина при экспериментальном сальмонеллезе цыплят
5. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
6. ВЫВОДЫ
7. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
8. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЕ
Сокращения, принятые в диссертации
A. pyogenes - Actinomyces pyogenes Act. suis — Actinobacillus suis
Act. pleuropneumoniae - Actinobacillus pleuropneumoniae Aer. hydrophila — Aeromonas hydrophila Aer. sobria - Aeromonas sobria
B. subtilis — Bacillus subtilis
C. coli — Campylobacter coli
C. jejuni — Campylobacter jejuni
Cor. pseudotuberculosis - Corynebacterium pseudotuberculosis
E. coli —Escherichia coli
Er. rhusiopathiae - Erysipelotrix rhusiopathiae
H. influenzae - Haemophilus influenzae
H. parasuis - Haemophilus parasuis
H. sommus - Haemophilus sommus
K. pneumonia - Klebsiella pneumoniae
L. innocua - Listeria innocua
L. monocytogenes - Listeria monocytogenes
Мус. bovigenitalium - Mycoplasma bovigenitalium
Мус. gallisepticum - Mycoplasma gallisepticum
Мус. hyopneumoniae — Mycoplasma hyopneumoniae
Мус. synovia - Mycoplasma synovia
P. haemalitica — Pasteurella haemolytica
P. mu I tocida. — Pasteurella multocida
Pr. vulgaris - Proteus vulgaris
Pr. mirabilis - Proteus mirabilis
Ps. aeruginosa — Pseudomonas aeruginosa
R. egui - Rhodococcus egui
S. enteritidis - Salmonella enteritidis
S. dublin — Salmonella dublin
реакции агглютинации на предметном стекле (Б. И. Антонов и соавт.,1986). Для быстрой идентификации кишечной палочки, выделенной из патологического материала были использованы идентификационные полоски коли-тест («PLIVA - Lachema а. s.», Brno, Чехия). Этот метод основан на определении ß- глюкокоронидазной активности и образования индола исследуемыми микроорганизмами в течение 4 часов. Предварительно готовили 0,5-1 мл суспензии тестируемого микроорганизма в стерильном изотоническом растворе NaCl. Плотность суспензии соответствовала 3 по шкале МакФарланда. Одну полоску коли-теста помещали в пробирку с суспензией таким образом, чтобы бумажная зона была полностью погружена в суспензию. Пробирки с суспензией и полосками коли-теста инкубировали в термостате в течение 4 часов при +37 °С. Затем проводили учет результатов. Реакцию на глюкоронидазу (GLR) определяли в темном помещении под ультрафиолетовой лампой, длина излучаемых волн ровнялась 360 нм. При положительной реакции наблюдалась голубая флуоресценция суспензии и бумажной части полоски коли-теста. Затем в пробирку с суспензией добавляли 4-5 капель реактива на индол (IND). В случае положительной реакции появлялось красное окрашивание. Использованную полоску коли-теста и суспензию микроорганизма стерилизовали в автоклаве при 121 °С, 1,1 атм. в течение 30 минут.
Предварительно перед постановкой теста сухие чистые пробирки проверяли под ультрафиолетовой лампой на отсутствие флуоресценции. В каждой серией анализов ставили положительный и отрицательный контроль. С этой целью использовали контрольные штаммы микроорганизмов (E. coli и В. subtilis). Для отрицательного контроля полоску коли-теста погружали в стерильный изотонический раствор NaCl, и инкубировали вместе с опытными пробирками, при +37 °С, в течение 20 часов, отрицательный контроль не должен был флуоресцировать.
Серогрупповую принадлежность выделяемых из патологического материала эшерихий определяли с помощью агглютинирующих О- колисыво-