Оптимизация системы контроля эпизоотического процесса некробактериоза крупного рогатого скота

• Автор: Лопатин, Сергей Викторович
• Шифр специальности: 16.00.03, 16.00.04
• Научная степень: Докторская
• Год защиты: 2006
• Место защиты: Новосибирск
• Количество страниц: 325 с. : ил.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Распространение болезней, связанных с хромотой

и некробактсриозом

1.2. Экономический ущерб, обусловленный поражениями

конечностей и некробактериозом

1.3. Методы диагностики некробактериоза

1.4. Основные методы профилактики и борьбы с некробактериозом сельскохозяйственных животных

1.4Л. Неспецифические, ветеринарносанитарные методы

1.4.2. Биологические специфические профилактические

препараты и их применение

1.5. Препараты и методы, применяемые для

лечения больных некробактериозом животных
1.6. Заключение по обзору литературы
2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Методы исследований и объем работы
2.2. Результаты исследований
2.2.1. Обоснование необходимости совершенствования системы контроля эпизоотического процесса некробактериоза крупного
рогатого скота в связи с многообразием форм его проявления
2.2.2. Совершенствование методов диагностики некробактериоза сельскохозяйственных животных
2.2.2.1. Усовершенствование метода отбора биоматериала из пораженной конечности для лабораторного исследования
.2.2. Сравнительная эффективность индикация i бактериологическим методом и с помощью гнездовой ПЦР
2.2.3. Определение роли специфической профилактики в системе контроля эпизоотического процесса некробактериоза крупного рогатого скота
2.2.3.1. Регламент получения антигена i и постановка реакции агглютинации
2.2.3.1.1. Выбор культуры изолята в качестве антигена
2.2.3.1.2. Методика приготовления антигена
2.2.3.1.3. Техника постановки РА
2.2.3.2. Изготовление и апробация вакцины ГОА ИЭВСиДВ
2.2.3.2.1. Определение иммунизирующей дозы вакцины
2.2.3.2.2. Испытание вакцины в неблагополучных по некробактериозу хозяйствах
2.2.3.3. Сочетанное применение вакцинации и неспецифических мероприятий при оздоровлении от некробактериоза
2.2.3.4. Одномоментное испытание разных разрабатываемых противонекробактериозных вакцин в однотипных условиях
2.2.4. Оздоровление неблагополучных по некробактериозу хозяйств с разной эпизоотической ситуацией неспецифическими методами
2.2.4.1. Естественная резистентность организма крупного рогатого скота как условие эффективности неспецифических методов оздоровления
2.2.4.2. Применение неспецифических мероприятий в неблагополучных хозяйствах
2.2.5. Разработка и испытание препаратов для лечения больных некробактериозом животных
2.2.5.1. Новый лекарственный препарат некрогель местного действия
2.2.5.1.1.Состав препарата и доклинические исследования
2.2.5.1.2. Изучение острой токсичности некрогеля для белых мышей при введении в желудок
2.2.5.1.3. Изучение острой токсичности некрогеля для белых крыс
2.2.5.1.4. Изучение местнораздражающего действия некрогеля на лабораторных кролики, морские свинки и сельскохозяйственных животных коровы с проведением общего анализа крови
2.2.5.1.5. Определение стерильности некрогеля
2.2.5.1.6. Изучение аллергизирующсго действия некрогеля
2.2.5.1.7. Определение лечебной эффективности некрогеля в контролируемых производственных опытах
2.2.5.1.8. Производственное испытание препарата некрогель в ряде регионов страны
2.2.5.1.9. Экономическая эффективность применения некрогеля при некробактериозе крупного рогатого скота
2.2.5.2. Разработка препарата местного действия в форме присыпки
2.2.5.3. Испытание лечебных препаратов разных фирмпроизводителей
2.2.5.4. Разработка и испытание инъекционных лечебных препаратов
3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ
4. ВЫВОДЫ
5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
6. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
7. ПРИЛОЖЕНИЕ
ВВЕДЕНИЕ


Высокочувствительны к гемолизину были эритроциты лошади, собаки, мыши, в то же время эритроциты крупного рогатого скота, овец, коз и цыплят не обладали данным свойством. Выявлена высокая корреляция между чувствительностью и содержанием фосфатидихолина. Авторы делают заключение, что фосфатидихолин вполне вероятно может быть рецептором для гемолизина i . Австралийские ученые . РНК. М. . Препарат из цитоплазмы бактерий вызывал главным образом эритему кожи. М. Капое, М. М. I изучали реакцию кожи мышей и морских свинок, вызванную внутрикожным введением липополисахарида i . Они установили, что через ч после инъекции липополисахарид вызывал у мышей геморагическое воспаление, увеличивал местную сосудистую чувствительность, а у морских свинок вызывал эритему и геморрагическое воспаление кожи. Эти научные открытия японских ученых показывают, что токсин и липополисахарид i играют важную роль в возникновении первичного поражения животных бактериальной инфекцией. Иммуноферментный анализ I с экстрактом антигена i для определения специфических иммуноглобулинов I и Му инфицированных животных предложили М. Капое . Ученые установили, что метод I обнаруживал увеличение 0, I у большинства животных с абсцессами печени, при этом I у них не выявлялся. Результаты исследований показали, что метод I для выявления I может быть полезным для серодиагностики некробактериоза крупного рогатого скота. Гемолитическая активность i vi i . I viv при инъекции мышам титр гемолизина составлял от 6 до 1 8, обнаружены абсцессы в печени, и из нее выделяли бактерии данного биотипа в количестве от 5 до 6 на 1г ткани органа. Они установили, что гемагглютинация была свойственна всем штаммам, выделенным из абсцессов печени, а из рубцового содержимого только некоторым штаммам биотипа i . I. x изучали фенотипическую характеристику и тип липополисахаридов i , выделенных от животных и людей. Они установили, что для штаммов биотипа В характерна форма бактерий в виде кокков, липополисахарид неровный шершавый, и для выявления активности липазы требуется инкубация культур более 2 дней. Бактерии штаммов биотипа А имели форму палочек, липополисахарид гладкий, и для выявления активности липазы требуется два дня. К. . ДНК гена лейкотоксина i . Они отмечают, что лейкотоксин главный фактор вирулентности возбудителя некробактериоза. Он вызывает интоксикацию иммунной системы, включая клеточную активацию нейтрофилов, в последующем гибель фагоцитов и эффекторных клеток иммунитета, это основное его патогенное действие на организм животных. Исследователи сообщают, что амплификация накопление, размножение полимеразноцепной реакции межгенного пространства между и генами рибосомной РНК биотипов i дают идентичные особенности, которые можно использовать для идентификации данных видов бактерий. М. . Д.А. Хузин с соавт. Е.К. Акимов с соавт. ИФА. Исследователи из Дании , В. В. получили неожиданную перекрестную реакцию с i в ПЦР, разработанную для определения разных видов микоплазм. Предварительно изучали штаммов i . Установлено, что штаммов i реагировали положительно, 7 отрицательно, 2 штамма показали переменный результат. В.И. Семенихин, С. А. Юрик, А. А. Самоловов Н. В. Некрасова, В. И. Семенихин В. И. Семенихин, Н. В. Некрасова А. А. Самоловов В. И. Семенихин, А. А. Самоловов, Н. В. Некрасова Н. В. Некрасова , сообщают, что разработан метод выделения геномной ДНК i из биологических образцов и полимеразная цепная реакция с гнездовыми вложенными праймерами, позволяющая выявлять патогенные штаммы возбудителя некробактериоза. В.А. Молоканов, В. М. Щеглов, М. Т. Байкенов предложили ранний способ диагностики и прогнозирования болезней копытец у коров. Исследователи изучали кожную аллергическую реакцию у больных и здоровых животных и сравнивали ее с наличием титров антител к белку кератину в сыворотке крови. Сравнительный анализ учета результатов аллергической реакции и заболеваемости копытец у коров позволяет считать внутрикожную аллергическую пробу высокоэффективным диагностическим тестом. ПЦР с соответствующим праймером может быть использована, как метод для дифференциации подвидов i , выделяемых от крупного рогатого скота с патологическими изменениями.