Влияние Lys-Glu-Asp-GLy и Ala-Glu-Asp-Gly на иммунитет, гемостаз, морфологию и функцию щитовидной железы при гипофизэктомии (экспериментальное исследование)

• Автор: Русаева, Наталья Сергеевна
• Шифр специальности: 03.00.13
• Научная степень: Кандидатская
• Количество страниц: 202 с.

Условные обозначения

ГЛАВА 1 Обзор литературы

1.1. Гипоталамо - гипофизарно - тиреоидная система

1.2. Нейроиммуноэндокринная регуляция

1.3. Влияние гипофиза на систему иммунитета и гемостаза

1.4. Основные свдения о морфологии и функции

щитовидной железы

1.5. Влияние щитовидной железы на систему иммунитета и гемостаза

1.6. Роль биологически активных полипептидов в регуляции функции щитовидной железы

ГЛАВА 2 Материалы и методы исследования

2.1. Метод гипофизэктомии

2.2. Метод выделения и изучения цитомединовых фракций адено- и нейрогипофиза
2.3. Метод определения
гормонов
2.4. Методы исследования
иммунитета
2.5. Методы исследования системы
гемостаза
2.6. Морфологические
методы
2.7. Статистическая обработка материала
ГЛАВА 3. Влияние гипофизэктомии на иммунитет, гемостаз и

функцию щитовидной железы у птиц в онтогенезе
3.1. Показатели иммунитета, гемостаза, и функции щитовидной железы у птиц в онтогенезе
3.2. Влияние гипофизэктомии на иммунитет, гемостаз, и функцию щитовидной железы у птиц в онтогенезе
ГЛАВА 4. Влияние ППДГ и ПЗДГ на иммунитет, гемостаз и функцию щитовидной железы у птиц, гипофизэктомированных на различные сроки жизни
4.1. Влияние ППДГ и ПЗДГ на иммунитет, гемостаз и функцию щитовидной железы у неонатально
гипофизэктомированных цыплят
4.2. Влияние ППДГ и ПЗДГ на иммунитет, гемостаз и функцию щитовидной железы у цыплят
гипофизэктомированных на пятые сутки жизни
4.3. Влияние ППДГ и ПЗДГ на иммунитет, гемостаз и функцию щитовидной железы у птиц
гипофизэктомированных на сороковые сутки жизни
4.4. Влияние ППДГ и ПЗДГ на иммунитет, гемостаз и функцию щитовидной железы у птиц,
гипофизэктомированных в возрасте одного года
4.5. Влияние ППДГ и ПЗДГ на иммунитет, гемостаз и функцию щитовидной железы у птиц,
гипофизэктомированных в возрасте пяти лет
ГЛАВА 5. Влияние ППДГ и ПЗДГ на морфологию щитовидной железы у птиц, гипофизэктомированных на различных сроках жизни
5.1. морфология щитовидной железы у птиц в онтогенезе... 121
5.2. морфология щитовидной железы после гипофизэктомии, проведенной на разных сроках жизни

птиц
5.3. влияние ППДГ и ПЗДГ на морфологию щитовидной
железы у неонатально гипофизэктомированных цыплят 134
5.4. Влияние ППДГ и ПЗДГ на морфологию щитовидной железы у цыплят, гипофизэктомированных на пятые сутки
жизни
5.5. Влияние ППДГ и ПЗДГ на морфологию щитовидной железы у птиц, гипофизэктомированных на сороковые
сутки жизни
5.6. Влияние ППДГ и ПЗДГ на морфологию щитовидной железы у птиц, гипофизэктомированных в возрасте одного
года
5.7. Влияние ППДГ и ПЗДГ на морфологию щитовидной
железы у птиц, гипофизэктомированных в возрасте пяти лет 151
ГЛАВА 6. Обсуждение полученных результатов
Выводы
Список литературы

Содержание, питание, уход за птицами и выведение их из эксперимента осуществляли в соответствии с требованиями «Правил проведения, работ с использованием экспериментальных животных» (Приложение к приказу М3 СССР от 12.08.1977г. № 755).
2.2. Метод выделения и изучения цитомединовых фракций адено-и нейрогипофиза
Биологически активные полипептиды из гипофиза получали по методу В.Х. Хавинсона, В.Г. Морозова (1974) в нашей модификации. Гипофизы свиней отмывали проточной холодной водой, разделяли на. доли, замораживали при температуре: -15 -20 °С на. 48 часов, затем размораживали, измельчали и экстрагировали в 3 % уксусной кислоте в присутствии хлорида цинка в течение 72 часов при температуре +4 °С. Жидкость, с биологически активными соединениями сливали и центрифугировали при 3000 ё в течение 30 минут. Из супернатанта ацетоном осаждали (в соотношении 1:5) биологически-активное1 вещество и фильтровали надосадочную жидкость через бумажный! фильтр. В; полученный фильтрат добавляли охлажденный до-+4° С ацетон в соотношении! 1:5, перемешивали и помещали в холодильник при-температуре +4 °С на 12 часов. Далее производили фильтрацию через бумажный, фильтр. Отфильтрованный осадок снимали с фильтра и высушивали при +4 °С в течение суток. Полученный комплекс, полипептидов измельчали в фарфоровой ступке и растворяли в дистиллированной воде в соотношении 1:20. Раствор вновь фильтровали через бумажный фильтр и в фильтрат добавляли охлажденный ацетон в соотношении 1:5, перемешивали и оставляли на 12 часов при +4 °С, после чего, осажденный порошок отфильтровывали на бумажном фильтре, высушивали и расфасовывали в пластиковые пробирки с винтовыми пробками.
Аминокислотный анализ полученных цитомединов проводили на АМК-анализаторе «ВюПошс ЬС-3000» (США), расход буферов 0,22 мкл/мин, доза