Разработка и внедрение метода использования плазмы, обогащенной тромбоцитами, при хирургических стоматологических вмешательствах

• Автор: Лалабекян, Баграт Арменович
• Шифр специальности: 14.00.21
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2006
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 75 с. : 43 ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА ПЕРВАЯ Обзор литературы Современные представления о регенерации костной ткани

1.1. Биология регенерации костной ткани

1.2. Современные остеозамещающие материалы

1.3. Применение плазмы, богатой тромбоцитами,

в современной хирургии

ГЛАВА ВТОРАЯ

Материалы и методы исследования

2.1. Разработка протокола приготовления плазмы,

обогащенной тромбоцитами
2.2. Экспериментальные исследования протоколов
приготовления плазмы, обогащенной тромбоцитами. Анализ количества тромбоцитов
2.3. Общая характеристика клинических
исследований
ГЛАВА ТРЕТЬЯ
Собственные исследования
3.1. Результаты экспериментальных исследований

3.1.1. Результаты экспериментального анализа плазмы, обогащенной тромбоцитами
3.2. Результаты клинических исследований
3.2.1. Результаты клинического применения плазмы, обогащенной тромбоцитами
3.2.2. Клинические примеры
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
ВЫВОДЫ
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЕ Список сокращений

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность проблемы
В современной реконструктивной хирургии челюстно-лицевой области и стоматологической имплантологии широкое распространение получили различные остеозамещающие материалы. Данные материалы используются для замещения костных дефектов, реконструкции лицевого скелета и.т.д. Все остеозамещающие материалы применяются с целью восполнения дефекта костной ткани путем регенерации, но не репарации. Эффективность регенерации напрямую зависит от вида применяемого материала [2-5,7,13,16, 19,32,50,75,79,144].
Остеозамещающие материалы можно отнести к следующим группам: аутокость, аллокость, ксенокость, синтетические материалы и комбинация вышеуказанных материалов. Аутокость является «золотым стандартом» для материалов, применяемых при замещении костных дефектов. Это связано с тем, что, во-первых, аутокость не вызывает каких либо иммунологических реакций, во-вторых, она одновременно является как остеоиндуктором, так и остеокондуктором, причем остеоиндуктивные свойства представлены клетками кости и факторами роста [88,158]. Недостаточное количество получаемой аутокости и дополнительная травма, наносимая при заборе аутокости, ограничивают ее применение в клинической практике. В случае аллокости также присутствует ряд отрицательных моментов: во-первых, это иммуно-генность и возможность передачи вирусов гепатита и ВИЧ, а во-вторых, низкая остеоиндуктивная активность, связанная с недостаточным количеством факторов роста и отсутствием каких-либо клеток кости [15,17,50,63,65,66,82]. Материалы на основе ксенокости, полученной, в основном, из костей крупного рогатого скота, имеют следующие недостатки: относительно высокую иммуногенность и низкий остеоиндуктивный потенциал. Синтетические

от плазмы, бедной тромбоцитами). Второй протокол, разработанный в Воєнно - Медицинской академии Белграда (Белград, Югославия) также предполагал двухэтапное центрифугирование. На первом этапе центрифугирование производилось с ускорением 2250 - 20 мин, а на втором этапе - 6300 - 15 мин. Третий протокол, разработанный на кафедре факультетской хирургической стоматологии и имплантологии МГМСУ, также предполагал двухэтапное центрифугирование. Однако, в нашем протоколе центрифугирование проводилось при гораздо высоких значениях ускорения. На первом этапе ускорение составляло 5000 - 20 мин., а на втором этапе - 25000 - 15 мин. Высокие значения ускорения были выбраны нами для более тщательной сепарации крови.
Этапы приготовления ОТП были следующими. После установки катетера УАЗОБІХ, к ниму присоединяли переходник МиЬТІАОАРТЕЕ. для подключения пробирок МОЬЮУЕТТЕ. После забора крови и отсоединения от катетера пробирок, отламывался поршень и пробирка интенсивно встряхивались для смешивания крови с цитратом натрия. После смешивания пробирки помешались в штатив на время программирования центрифуги.
После первого этапа центрифугирования отмечалось разделение крови на фракции. Отмечали четыре фракции. Нижняя фракция состоявшая из эритроцитов. Над эритроцитами отмечался ЛТС, представленный белесоватой пленкой (лейкоцитами) и слоем, содержащим тромбоциты. Верхняя фракция была представлена плазмой, не содержащей каких-либо клеток крови.
При помощи иглы БТЕЮСАМ, подсоединенной к нейтральной пробирке МОБЮУЕТТ, отбирали верхнюю фракцию ЛТС, содержащей тромбоциты и плазму. Допустимым являлся забор незначительного количества эритроцитов и лейкоцитов. Пробирки с эритроцитами утилизировали, а пробирки, содержащие плазму и тромбоциты готовили для второго этапа. После второго центрифугирования отмечалось разделение на две фракции: нижняя фракция, содержащая тромбоциты и незначительное количество эритроцитов и верхняя,