Структурно-функциональная характеристика нонапептидергической гипоталамо-гипофизарной нейроэндокринной системы и респераторных отделов лёгкого крыс в условиях интратрахеального инфицирования

• Автор: Лабутин, Илья Викторович
• Шифр специальности: 03.03.04
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2010
• Место защиты: Оренбург
• Количество страниц: 122 с. : 57 ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ
Введение
Глава 1. Структурно-функциональные основы компенсаторноприспособительных реакций и репаративных возможностей ацинусов легких млекопитающих и человека в аспекте нейроэндокринной регуляции тканевого и клеточного гомеостаза (обзор литературы)

Глава 2. Материалы и методы исследования

2.1. Материалы исследования

2.2.Методики исследования

Глава 3. Результаты собственных исследований

3.1.Морфофункциональная оценка альвеолярных структур легких и нонапептидергической гипоталамо-гипофизарной нейросекреторной системы (ГГНС) крыс в условиях инфицирования
3.2. Структурно-функциональная характеристика лёгочных ацинусов крыс при электролитическом выключении крупноклеточных ядер гипоталамуса
3.3. Реактивность и пластичность альвеолярных структур лёгкого крыс в условиях их сокультивирования in vivo с крупноклеточными ядрами гипоталамуса
Глава 4. Обсуждение полученных результатов
Выводы
Список литературы

Введение Актуальность исследования
Вопросы физиологического и репаративного гистогенезов, тканевой реорганизации макроорганизмов в условиях их интервенции современными бактериальными патогенами являются наиболее важными и малоизученными. Решение их необходимо для понимания механизмов клеточных и тканевых реорганизаций макроорганизмов в условиях многогранных взаимодействий с прокариотами (Стадников
A.A., 2001, 2005, 2010; Бухарин О.В. с соавт, 2004), что чрезвычайно важно в клинических аспектах клеточной биологии, инфектологии и находится в центре внимания исследователей.
Благодаря внутригеномным преобразованиям микроорганизмы приобрели способность к значительной изменчивости своих свойств, обеспечивающих противостояние защитным силам организмов млекопитающих, к числу которых относятся и генетически детерминированные свойства и биологические особенности структурных (клеточных, тканевых) элементов эукариот, в том числе и механизмы репаративных гистогенезов (Стадников A.A., 2001, 2005; Стадников A.A., Сеньчукова М.А., 2009). Известно, что наличие антилизоцимной, антиинтерфероновой, антилактоферриновой активностей у микробных патогенов существенно затрудняет реализацию репаративных процессов в различных тканях (Бухарин О.В., Усвяцов Б.Я., 1996; Бухарин О.В., Литвин В.Ю., 1997; Бухарин О.В., 1999; Ковбык Л.В., 2000; Козлова А.Н., 2009, 2010). Однако до сих пор малоизученными остаются вопросы взаимодействия микроорганизмов, обладающих соответствующим персистентным потенциалом, и тканевых элементов ацинусов лёгких, влияния прокариот на репаративные

процессы в респираторных отделах лёгких.
Согласно имеющимся данным, респираторный отдел лёгкого (ацинус) состоит из альвеолоцитов, стромальных элементов и сосудов. Однако закономерности межклеточных отношений, принципы дифферонной организации этих элементов остаются до конца невыясненными. До сих пор нет единой точки зрения относительно судьбы дифференцированных клеток в условиях репаративного восстановления тканей легких (Токин И.Б., 1972; Саркисов Д.С., 1973, 1977; Лиознер Л.Д., 1982; Ерохин В.В., Романова Л.К., 2000; Полякова
B.C., 2004; Мещеряков К.Н., 2008).
Безусловно, изучение особенностей регенераторных возможностей альвеолоцитов и структурных компонентов подлежащей соединительной ткани, характер их взаимодействия в очаге повреждения друг с другом, с клетками воспаления и бактериальными патогенами в процессе физиологической и репаративной регенерации до сих пор остаются чрезвычайно актуальным.
Существенным моментом в поддержании тканевого гомеостаза органов дыхания является обеспечение в организме сохранения общей массы клеток, необходимой для правильного функционирования органа, т.е. соотношение между делящимися, дифференцированными и гибнущими клетками. Достижение этого обеспечивается как генетическими механизмами, так и воздействием комплекса регуляторных факторов, внутрисистемных (тканеспецифические ингибиторы и стимуляторы клеточной регенерации) и межсистемных (нейрогуморальные факторы).
Среди важнейших регулирующих систем организма весьма существенна роль гипоталамической нейроэндокринной системы в поддержании тканевого и клеточного гомеостаза, обеспечении процессов адаптации и компенсации нарушенных функций различных органов

стеклянных капиллярах. Для электролитического разрушения крупноклеточных ядер гипоталамуса использовался анодный ток 0,5-1 тА, 200 вольт, длительность воздействия составляла 3-5 секунд. Для контроля были использованы 12 ложнооперированных животных (трепанация черепа без разрушения ядер гипоталамуса)-по 4 особи на каждой стадии серии.
В третьей серии было проведено совместное культивирование альвеолярных структур лёгких (от крыс, инфицированных К1. pneumoniae с AJIA+ и АЛА- через 3 суток после введения патогена и интактных животных) с крупноклеточными ядрами гипоталамуса по методу Ф.М. Лазаренко (1959). При этом структуры лёгкого для имплантации были взяты от 24 инфицированных (штаммами К1. pneumoniae с АЛА+ и АЛА-) крыс и 12 интактных животных. Крысами-донорами для получения ядер гипоталамуса служили 24 интактных животных. Крысами-реципиентами были 36 животных.
Крыс-доноров декапитировали под эфирным рауш-наркозом, производили вскрытие грудной полости и легкие осторожно и быстро выделяли из окружающих тканей и помещали в стерильные чашки Петри с охлажденной (+4°С) средой 199. Взятые кусочки размером 1-1,5мм3 тщательно промывали в нескольких порциях среды 199 с добавлением стрептомицина в разведении 50000 ед. на 1 мл. Указанные дозы антибиотиков не влияют на результаты эксперимента (Хлыстова
З.С., 1958), но предотвращают имплантаты от инфицирования. Затем полученный материал измельчали глазными ножницами до консистенции кашицы. Образовавшуюся массу смешивали с целлоидиновым "песочком" в соотношении 1:2 согласно рекомендациям автора метода (Лазаренко Ф.М., 1959). Затем к полученному материалу добавлялись соответствующие фрагменты гипоталамуса. У животных-реципиентов накануне имплантации производили электролитическое