Влияние среды обитания на активность и pH-зависимость пищеварительных гидролаз у рыб, их потенциальных объектов питания и микробиоты

• Автор: Золотарева, Галина Викторовна
• Шифр специальности: 03.03.01
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2015
• Место защиты: Тирасполь
• Количество страниц: 146 с. : ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ
ВВЕДЕНИЕ

Глава І.ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Роль пищеварительной системы в жизнедеятельности рыб и функционировании биоценозов

1.2. Краткая характеристика процессов пищеварения у рыб

1.2.1.Особенности процессов пищеваренияу рыб

1.2.2. Типы пищеварения у рыб

1.2.3. Характеристика пищеварительных ферментов рыб

1.2.3.1. Активность протеаз пищеварительного тракта рыб

1.2.3.2. Активность гликозидаз пищеварительного тракта рыб

1.2.4.Влияние pH на активность пищеварительных ферментов рыб
1.2.4.1.Влияние pH на активность протеаз пищеварительного тракта рыб
1.2.4.2. Влияние pH на активность гликозидаз пищеварительного тракта рыб
1.2.5. Влияние состава пищи на активность протеаз
1.2.6. Влияние состава пищи на активность гликозидаз
1.3. Ферменты объектов питания рыб, обеспечивающих индуцированный аутолиз
1.3.1. Активность протеаз и гликозидаз в организме объектов питания ихтиофагов
1.3.2. Активность протеаз и гликозидаз в организме объектов питаниятипичных и факультативных планкто- и бентофагов
1.4. Микробиота пищеварительного тракта рыб
1.4.1. Видовой состав и численность энтеральной микробиоты у рыб
1.4.2. Зависимость видового состава и численности энтеральной микробиоты от характера
питания и состава пищи рыб
1.4.3. Зависимость видового состава и численности энтеральной микробиоты от условий среды
обитания рыб
1.4.5. Ферменты микроорганизмов, обеспечивающие симбионтное пищеварение у рыб
1.4.6.Ферменты микроорганизмов объектов питания рыб
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Краткая характеристика районов исследования
2.1.1. Рыбинское водохранилище
2.1.2. Кучурганское водохранилище
2.1.3. Река Днестр
2.2. Материал исследования
2.2.1. Характеристика рыб, исследованных в качестве консументов
2.2.2. Характеристика потенциальных объектов питания рыб
2.2.3. Биологическая характеристика объектов исследования
2.3. Методы исследований
2.3.1. Приготовление ферментативно-активных препаратов
2.3.2. Отбор проб для микробиологических исследований
2.3.3. Наращивание биомассы микроорганизмов для определения ферментативной активности
2.3.4. Определение активности нротеаз
2.3.5. Определение активности гликозидаз
2.3.6. Статистическая обработка данных
ГЛЛВЛ 3. АКТИВНОСТЬ ПРОТЕАЗ II ГЛИКОЗИДАЗ, ФУНКЦИОНИРУЮЩИХ В КИШЕЧНИКЕ У РЫБ ИЗ РАЗНЫХ ГЕОГРАФИЧЕСКИХ ЗОН, А ТАКЖЕ ИХ ПОТЕНЦИАЛЬНЫХ ОБЪЕКТОВ ПИТАНИЯ II СОПУТСТВУЮЩЕЙ МИКРОБИОТЫ
3.1. Активность протеаз слизистой оболочки кишечника, химуса и энтеральной микробиоты у рыб из Рыбинского и Кучурганского водохранилищ
3.2. Активность гликозидаз слизистой оболочки кишечника, химуса и энтеральной микробиоты рыб из Рыбинского и Кучурганского водохранилищ
3.3. Активность протеаз и гликозидаз потенциальных объектов питания рыб и их сопутствующей микробиоты (на примере гидробионтов Кучурганского водохранилища)
3.4. Заключение
ГЛАВА 4. ВЛИЯНИЕ pH НА АКТИВНОСТЬ ПРОТЕАЗ II ГЛИКОЗИДАЗ, ФУНКЦИОНИРУЮЩИХ В КИШЕЧНИКЕ У РЫБ ИЗ РАЗНЫХ ГЕОГРАФИЧЕСКИХ ЗОН, А ТАКЖЕ ИХ ПОТЕНЦИАЛЬНЫХ ОБЪЕКТОВ ПИТАНИЯ II СОПУТСТВУЮЩЕЙ МИКРОБИОТЫ
4.1. Влияние pH на активность протеаз слизистой оболочки кишечника, химуса и энтеральной микробиоты у рыб разных видов из Рыбинского водохранилища
4.2. Влияние pH на активность протеаз слизистой оболочки кишечника, химуса и энтеральной микробиоты у рыб разных видов из Кучурганского водохранилища
4.3. Влияние pH на активность гликозидаз слизистой оболочки кишечника, химуса и энтеральной микробиоты у рыб разных видов из Рыбинского водохранилища
4.4. Влияние pH на активность гликозидаз слизистой оболочки кишечника, химуса и энтеральной микробиоты у рыб разных видов из Кучурганского водохранилища
4.5. Влияние pH на активность протеаз потенциальных объектов питания ихтиофагов и их сопутствующей микробиоты
4.6. Влияние pH на активность протеаз потенциальных объектов питания бентофагов и их сопутствующей микробиоты
4.7. Влияние pH на активность гликозидаз потенциальных объектов питания ихтиофагов и сопутствующей микробиоты
4.8. Влияние pH на активность гликозидаз потенциальных объектов питания бентофагов и сопутствующей микробиоты
4.9. Заключение
ГЛАВА 5. ВЛИЯНЕ УСЛОВИЙ СРЕДЫ ОБИТАНИЯ НА АКТИВНОСТЬ ГИДРОЛАЗСЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ КИШЕЧНИКА, ХИМУСА И ЭНТЕРАЛЬНОЙ МИКРОБИОТЫ У РЫБ ИЗ ОДНОЙ ГЕОГРАФИЧЕСКОЙ ЗОНЫ В ШИРОКОМ ДИАПАЗОНЕ ЗНАЧЕНИЙ pH
5.1. Влияние условий среды обитания на активность протеаз слизистой оболочки кишечника, химуса и энтеральной микробиоты карася в широком диапазоне значений pH
5.2. Влияние условий среды обитания на активность гликозидаз химуса, слизистой и энтеральной микробиоты карася из разных мест обитания в широком диапазоне значений pH
5.3. Заключение
ОБЩЕЕ ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЕ

в то время как при интенсивном кормлении в кишечнике обнаруживается 18 видов бактерий. Численность бактерий в 1 г сырого содержимого пищеварительного тракта другого представителя сем. лососевых - кумжи Salmo trutta колеблется в пределах 1.0103-22 105 клеток (Syvokiene et al., 1997).
При исследовании прудовых рыб выявлена разная численность бактерий в разных отделах пищеварительного тракта. Максимум численности бактерий в переднем и среднем отделах кишечника позволил предположить их участие в расщеплении питательных веществ, а увеличение в ряде случаев общего количества бактерий в заднем отделе кишечника рыб объяснялось концентрированием пищевых волокон (Шивокене, 1989).
1.4.3. Зависимость видового состава и численности энтеральной микробиоты от условии среды обитаня рыб
Видовой состав и численность энтеральной микробиоты пищеварительного тракта водных организмов зависит от различных факторов водной среды (температура, соленость, pH и другие). При исследовании дорады Spams aurata из разных мест обитания был обнаружен различный состав микробиоты кишечника. Так, микробиота кишечника рыб из эвтрофной лагуны Тирренского моря отличалась более разнообразным составом (Pseudomonassp.(33.3%), Sphingomonas paucimobilis (10.5%), Proteus sp.(8.8%), Chryscobacterium sp. B-G-R2A3 (5.3%), Arctic soil bacterium A1T3 (5.3%), Sphingobacteriuni sp. (5.3%), Psychrobacter sp. (3.5%), Psychrobacter maritimus (3.5%), Leucobacter sp. (3.5%), Yersinia bercovieri (3.5%), Acromonas sp. (3.5%), Acromonas molluscorum (1.7%), и Erwiniapersicina (1.7%)) и численностью (от 190 до 6900 КОЕ/Т) по сравнению с микробиотой рыб из олиготрофной лагуны, отличающейся более бедным качественным составом (.Pseudomonas sp. (90%), Janthinobactcrium sp. (8%) и Psychrobacter maritimus (2%)) и численностью - от 65 до 3100 КОЕ/г (Floris et al., 2013).
Также есть сведения о том, что на численность микробиоты рыб значительно влияет сезон. Так, количество бактерий в кишечнике у большинства бореальных видов рыб в весеннелетний период увеличивается в 10-100 раз, достигая максимума в июле (Ю9), в то время как минимальное количество бактерий отмечается в феврале - 4.5-103 микробиальных клеток (Шивокене, 1989). У сеголеток и двухлеток карпа Cyprinus carpio максимальная численность микроорганизмов также обнаружена в июле - З Ю10 и 44.6-Ю10 соответственно (Баздеркина, 1992). Численность гетеротрофных и протеолитических бактерий содержимого кишечника камбалы Pleuronectes platessa и балтийской сельди Clupea harengus membras к осени снижается на порядок, а амилолитические бактерии полностью исчезают. У балтийской трески Gadus morhua callarias численность гетеротрофных микроорганизмов в ноябре снижается на 2 порядкапо сравнению с летним периодом, а протеолитические бактерии вообще не