Клинико-микробиологические особенности акнеподобных дерматозов, осложненных демодекозом

• Автор: Елистратова, Людмила Леонтьевна
• Шифр специальности: 03.02.03
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2013
• Место защиты: Санкт-Петербург
• Количество страниц: 101 с. : 39 ил.

СОДЕРЖАНИЕ
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
ВВЕДЕНИЕ
Глава Е ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Современное состояние проблемы акнеподобных дерматозов
1.2. Значение микроскопических клещей рода Demodex в развитии дерматозов
1.3. Микрофлора кожи
Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Обследуемый контингент
2.2. Методы исследования
2.2.1. Методы выявления микроскопических клещей рода Demodex
2.2.2. Методы изучения микрофлоры кожи лица
2.2.3. Определение вирулентности in vivo
2.2.4. Выявление ферментов агрессии
2.2.5. Определение чувствительности микроорганизмов к химиопрепаратам
2.2.6. Исследование методом ПЦР в режиме реального времени
2.2.7. Клинико-диагностическое обследование пациентов розацеа
2.2.8. Клинико-диагностическое обследование пациентов периорального дерматита
2.3. Методы статистической обработки
Глава 3. КЛИНИЧЕСМКИЕ ОСОБЕННОСТИ АКНЕПОДОБНЫХ ДЕРМАТОЗОВ, ОСЛОЖНЕННЫХ ДЕМОДЕКОЗОМ
3.1. Распространенность акнеподобных дерматозов в Ульяновске и Ульяновской области
3.2. Клиническая характеристика больных розацеа и периоральным дерматитом, осложненных демодекозом

3.2.1. Общая характеристика обследованных больных
3.2.2. Особенности течение розацеа
3.2.3. Проявления периорального дерматита
Глава 4. СОСТОЯНИЕ МИКРОБИОТЫ КОЖИ ЛИЦА У БОЛЬНЫХ АКНЕПОДОБНЫМИ ДЕРМАТОЗАМИ
4.1. Характеристика микробиоценоза кожи у больных
4.2. Особенности микробиоты кожи лица при розацеа
4.2.1. Особенности микробиоты кожи лица в зависимости от формы розацеа
4.2.2. Характеристика микрофлоры кожи лица в зависимости от длительности заболевания розацеа
4.3. Особенности микробиоты кожи лица при периоральном дерматите
4.3.1. Особенности микробиоты кожи лица в зависимости от формы периорального дерматита
4.3.2. Характеристика микрофлоры кожи лица в зависимости от длительности заболевания периорального дерматита
4.4. Характеристика биологических свойств бактерий рода Staphylococcus
4.4.1. Морфологические и культурально-биохимические свойства клинических изолятов Staphylococcus spp
4.4.2. Антибиотикорезистентность клинических изолятов Staphylococcus spp
4.5. Определение вирулентности стафилококков in vivo
Глава 5. МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ STAPHYLOCOCCUS HAEMOLYTICUS И STAPHYLOCOCCUS A UREUS
5.1. Подбор праймеров для выявления генетических детерминант вирулентности S. aureus и S. haemolyticus
5.2. Разработка протокола проведения амплификации
5.3. Результаты обнаружения нуклеотидных последовательностей генов ДНК-азы, липазы для S. aureus и гемолизина-Ш, а-гемолизина

для S. haemolyticus
Глава 6. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
ВЫВОДЫ
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

микроскопии нативных или окрашенных препаратов. Размеры микробных клеток определяли при помощи окуляр-микрометра.
Идентификацию стафилококков проводили согласно приказу Минздрава России от 28.12.1995 г. № 691 «О профилактике внутрибольничных инфекций в акушерских стационарах г. Москвы». Патогенность выделенных штаммов устанавливали по их способности вырабатывать ферменты агрессии. Гемолитическую активность определяли при посеве культур на кровяной агар [Покровский В.И., Поздеев O.K., 1999].
Видовую принадлежность микрококков определяли по методике В.П. Саргсяна [1988]. Ферментация глицерина у микрококков отсутствует. Первичная идентификация энтеробактерий проводилась на среде Клиглера, на которой изучали способность бактерий образовывать сероводород и отношение к глюкозе, лактозе, сахарозе и мочевине. О ферментации лактозы судили по появлению желтой окраски в скошенной части агара, о ферментации и газообразовании глюкозы - по такому же окрашиванию в столбике. По совокупности биохимических свойств, обнаруженных на питательной среде, определяли принадлежность культуры к семейству энтеробактерий.
Для определения рода энтеробактерий выбирали дифференциальнодиагностические тесты (тест на продукцию сероводорода, индола, аммиака).
Дрожжеподобные грибы рода Candida выделяли на среде Сабуро с левомицетином (200 мг/мл). Идентификацию выделенных штаммов микроорганизмов осуществляли на основе морфологических, культуральных, биохимических признаков в соответствии со схемой, предложенной В.Н. Ребровой [1989].
Измерение топологии поверхности бактерий проводили при помощи атомно-силового микроскопа «Solver-P47» компании NT-MDT в полуконтактном режиме (tatape mmode). АСМ-сканирование проводили стандартными кремниевыми зондами ASCI 1 («MicroMasch» Co., Эстония) в контактном режиме с одновременной регистрацией топографии и