Доставка любой диссертации в формате PDF и WORD за 499 руб. на e-mail - 20 мин. 800 000 наименований диссертаций и авторефератов. Все авторефераты диссертаций - БЕСПЛАТНО
Барышникова, Елена Ивановна
03.02.02
Кандидатская
2011
Покров
129 с. : ил.
Стоимость:
499 руб.
ОГЛАВЛЕНИЕ
ВВЕДЕНИЕ
1.1. Актуальность
1.2. Степень разработанности проблемы
1.3. Цель работы и задачи исследования
1.4. Научная новизна работы
1.5. Практическая значимость работы
1.6. Публикации результатов
1.7. Апробация работы
1.8. Соответствие содержания диссертации паспорту
специальности, по которой рекомендуется к защите
1.9. Структура и объем диссертационной работы 13.
1.10. Основные положения, выносимые на защиту
1.11. Личный вклад автора
ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
2.1. Определение болезни артрита-энцефалита коз и висна-маеди
2.2. Общая характеристика ретровирусов
2.3. Филогенетический анализ лентивирусов мелких жвачных... 16
2.4. Морфология и химический состав вирусов артрита-
энцефалита коз и висна-маеди
2.5. Репликация лентивирусов мелких жвачных
2.6. Устойчивость вирусов лентивирусов мелких жвачных к
воздействию внешних факторов
2.7. Эпизоотологические данные лентивирусов мелких
жвачных
2.8. Патологоанатомические изменения при лентивирусах мелких
жвачных
2.9. Диагностика лентивирусов мелких жвачных
2.10. Дифференциальная диагностика лентивирусов мелких
жвачных
2.11. Культивирование вирусов артрита-энцефалита коз и висна-маеди
2.12. Иммунитет при лентивирусах мелких жвачных
2.13. Специфические средства лечения и профилактики
2.14. Заключение по обзору литературы
СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
3.1. Материалы
3.1.1. Вирусы
3.1.2. Животные
3.1.3. Полевой материал
3.1.4. Сыворотки
3.1.5. Культура клеток
3.1.6. Плазмида и бактериальные штаммы
3.1.7. Питательные среды и растворы для культивирования
3.1.8. Белки и ферменты
3.1.9. Кислоты и основаниея
3.1.10. Хромогены и красители
3.1.11. Соли
3.1.12. Детергенты
3.1.13. Реактивы
3.1.14. Растворители
3.1.15. Хромотографические сорбенты и гелеобразующие
среды
3.1.16. Лабораторное оборудование
3.2. Методы
3.2.1. Получение и культивирование культуры клеток
синовиальной мембраны ягненка
3.2.2. Определение жизнеспособности клеток синовиальной мембраны ягненка
3.2.3. Криоконсервирование клеток синовиальной мембраны ягненка
3.2.4. Культивирование лентивирусов мелких жвачных
3.2.5. Бактериологические методы
3.2.6. Цитологические исследования
3.2.7. Получение специфических и контрольных антигенов
3.2.8. Реакция диффузионной преципитации
3.2.9. Непрямой метод цитохимического иммуноферментного анализа
3.2.10. Электрофоретический анализ и иммуноблотинг
3.2.11. Выделение и очистка нуклеиновых кислот
3.2.12. Постановка ПЦР с электрофоретической детекцией
3.2.13. Анализ ПЦР-продуктов
3.2.14. ПЦР в режиме реального времени
3.2.15. НКМ-анализ
3.2.16. Клонирование ПРЦ-фрагмента в плазмидный
вектор
3.2.17. Нуклеотидное секвенирование
3.2.18. Программное обеспечение
3.2.19. Статистическая обработка результатов
исследований
4. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
4.1. Получение первичной культуры клеток синовиальной мембраны ягненка и определение ее пермиссивности к лентивирусам мелких жвачных
использована для дальнейших исследований [117]. Есть данные о размножении ЛМЖ в культурах клеток легкого, селезенки, брюшины, сердца, мозжечка, семенников, надпочечников и почках овцы [117], а так же в перевиваемых культурах клеток трахеи телят, быков и почек свиней [7].
Для культивирования ВАЭК используют культуру клеток синовиальной мембраны козленка (СМК) [27, 102, 103]. ЦПД проявляется сипластообразованием через 6 дней после инфицирования у 85% клеток [103]. Это наблюдается даже в тех случаях, когда вирус в клетках не размножается. Образуются также однорядные, преломляющие свет веретенообразные клетки и гигантские многоядерные звездчатые клетки с упорядоченным расположением ядер. В большинстве случаев инфекция приводит к полному разрушению клеточного монослоя. Также в качестве., лабораторной модели используют первичную культуру клеток молочных желез. [1, 128; 105]. Длительное-культивирование вируса висны в культуре клеток эритроцитов человека также приводит к его модификации. Предполагают, что это происходит путем селекции под воздействием условий культивирования или рекомбинацией [1]. При культивировании: адаптированного к культурам клеток штамма вновь образованный вирус обнаруживается после латентного периода продолжительностью 16-20 ч; в течение следующих 16 ч титр вируса быстро нарастает. Репродукция продолжается до 96-120 ч, пока не наступит полная дегенерация монослоя [1].
Оптимальным для выявления вируса ВМ является сокультивирование инфицированных клеток с чувствительными клеточными культурами. Этот метод применятся для создания клеточной линии клеток эмбрионов легких коров, хронически инфицированные вирусом ВМ [132].
Для искусственного воспроизведения инфекции в качестве лабораторной модели используют естественно-восприимчивых животных -овец и коз. культивирования ЛМЖ может быть использование естественно-
Название работы | Автор | Дата защиты |
---|---|---|
Иммунобиологические свойства штамма ERA-CB 20M вируса бешенства и разработка на его основе антирабической вакцины | Лосич, Милана Анатольевна | 2014 |
Совершенствование методов выявления вируса гриппа птиц А/Н5N1 путем создания высокочувствительных диагностических систем | Левченко, Наталия Витальевна | 2011 |
Вирус Западного Нила в различных экосистемах юга Западной Сибири | Кононова, Юлия Владимировна | 2010 |