Разработка технологии производства панкреатического гидролизата рыбной муки и конструирование на его основе бактериологических питатетльных сред

• Автор: Шепелин, Анатолий Прокопьевич
• Шифр специальности: 03.01.06
• Научная степень: Докторская
• Год защиты: 2013
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 135 с. : 71 ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ

ПЕРЕЧЕНЬ СОКРАЩЕНИЙ, УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ,
СИМВОЛОВ
ВВЕДЕНИЕ
Глава 1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1 .Белковые гидролизаты - основа производства питательных
сред
1.1.1 .Источники белкового сырья
1.1.2.Способы переработки белкового сырья
1.1.3.Способы очистки гидролизатов
1.1.4.Высушивание белковых гидролизатов
1.1.5.Белковые гидролизаты, используемые в производстве питательных сред
1.2. Дифференциально-диагностические питательные среды для выделения энтеробактерий
1.2.1 .Питательные среды Эндо и Левина
1.2.2.Питательная среда висмут-сульфит агар
1.2.3 .Питательная среда бактоагар Плоскирева и ББ-агар
1.3 .Питательные среды для выделения возбудителя дифтерии
1 АПитательные среды для контроля микробной загрязнённости нестерильных лекарственных средств
1.5.Актуальность организации производства питательных сред
СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
Глава 2 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
2.1.Материал ы
2.1.1 .Штаммы бактерий, используемые для контроля качества питательных сред
2.2.Методы исследований
2.3.Методика получения гидролизатов
2.3.1.Методика проведения исследований при разработке технологии производства питательных сред
2.3.2.Физико-химические методы исследований
2.4. Методика проведения посева и учёта результатов
2.5.Программы сравнительных и Государственных испытаний

2.6. Статистическая обработка результатов
Глава 3 ТЕХНОЛОГИЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПАНКРЕАТИЧЕСКОГО ГИДРОЛИЗАТА РЫБНОЙ МУКИ
3.1. Физико-химический состав производственных партий рыбной муки
3.2. Продолжительность гидролиза
3.3 .Температура и pH гидролиза
3.4.Концентрация фермента
3.5.Гидромодул ь
3.6.Осветление и сушка гидролизатов
Глава 4 РАЗРАБОТКА СОСТАВА И УСЛОВИЙ ПОЛУЧЕНИЯ СУХОГО ПИТАТЕЛЬНОГО БУЛЬОНА И ПИТАТЕЛЬНОГО
АГАРА
Глава 5 РАЗРАБОТКА ТЕХНОЛОГИИ ПОЛУЧЕНИЯ ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ПИТАТЕЛЬНЫХ СРЕД ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ ЭНТЕРОБАКТЕРИЙ
3.3.1.Питательная среда Эндо-ГРМ агар
3.3.2.Питательная среда Левина-ГРМ агар
3.3.3.Питательная среда Висмут-сульфит-ГРМ-агар
3.3.4.Питательная среда SS-arap
3.4.Сравнительное исследование качества питательных сред
Глава 6 РАЗРАБОТКА ПИТАТЕЛЬНОЙ СРЕДЫ ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ
ВОЗБУДИТЕЛЯ ДИФТЕРИИ - КОРИНЕБАКАГАРА
Глава 7 ПИТАТЕЛЬНЫЕ СРЕДЫ ДЛЯ КОНТРОЛЯ МИКРОБНОЙ ЗАГРЯЗНЁННОСТИ НЕСТЕРИЛЬНЫХ ЛЕКАРСТВЕННЫХ СРЕДСТВ
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
ПЕРЕЧЕНЬ

П06щ

гиск
ГНЦПМБ

КТ А

ПГРМ

СРГМ

СОКРАЩЕНИИ, УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ, СИМВОЛОВ
- аминный азот
- общий азот
- белково-витаминный концентрат
- Государственный институт стандартизации и контроля медицинских биологических препаратов
Г осударственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии
- аббревиатура в названии питательных сред, указывающая на то, что в состав препарата входит гидролизат рыбной муки
- дальтон, единица молекулярной массы
- колонне образующие единицы
- кровяно-теллуритовый агар
- острые кишечные инфекции
- панкреатический гидролизат казеина
- панкреатический гидролизат рыбной муки
- промышленный регламент
- регистрационное удостоверение
- сухой питательный агар
- сухой питательный бульон
- стимулятор роста гемофильных микроорганизмов
- технические условия
- Фармакопейная статья
- экстракт кормовых дрожжей
- экстракт пекарных дрожжей

выделения коагулазоположительных стафилококков. Стафилококки образуют на среде мелкие, диаметром до 1 мм, бесцветные или светло-фиолетовые колонии с тёмным центром.
Ведущими зарубежными фирмами выпускается агар Левина (агар с эозином и метиленовым голубым) следующего состава, г/л [158,159]:
Oxoid BBL
пептон 10
панкреатический гидролизат желатина
лактоза
калия фосфат двузамещенный 2,0 2
эозин 0,4 0
метиленовый голубой 0,065 0
агар 15,0 15
1.2.2. Питательная среда висмут-сульфит агар
Большинство сальмонелл хорошо растёт на обычных питательных средах и не требует специальных ростовых факторов. Существенное влияние на рост сальмонелл может оказать pH среды. Оптимальная величина pH равна 6,5-7,5. Рост сальмонелл ограничивается или подавляется в присутствии высоких концентраций солей или сахаров. Ферментативные свойства сальмонелл разнообразны не только у представителей отдельных видов, но могут варьироваться и в пределах одного серовара. Они обычно образуют сероводород (S. paratyphi А и др. серовары редко) [7].
При выборе питательных сред для выделения сальмонелл учитывают происхождение пробы клинического материала (испражнения, кровь, моча и др.), предполагаемые виды энтеробактерий в соответствующей пробе, а также цель бактериологического исследования и другую информацию (диагноз, эпидемическая ситуация и др.), содержащуюся в сопроводительном документе.
При посеве материала с целью обнаружения сальмонелл необходимо использовать набор плотных и жидких элективных питательных сред, обеспечивающих наиболее благоприятные условия для роста сальмонелл (среды Плоскире-