Усовершенствование дифференциальной поствакцинальной диагностики бруцеллеза крупного рогатого скота

• Автор: Стеблева, Галина Михайловна
• Шифр специальности: 16.00.03
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 1998
• Место защиты: Новосибирск
• Количество страниц: 175 с.

ОГЛАВЛЕНИЕ

1. ВВЕДЕНИЕ
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
2.1. Роль специфической профилактики в системе противо-бруцеллезных мероприятий
2.2. Поствакцинальная диагностика бруцеллеза крупного рогатого скота при использовании различных схем специфической профилактики
2.3. Дифференциальная поствакцинальная диагностика бруцеллеза и ее роль в эпизоотической оценке стад крупного рогатого скота, привитого живыми противо-бруцеллезными вакцинами
2.4. Заключение по обзору литературы
3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
3.1. Материалы и методы исследований
3.2. Эпизоотическая оценка по бруцеллезу стад крупного рогатого скота, привитого живыми противобруцеллез-ными вакцинами, с использованием традиционных серологических методов дифференциальной диагностики
(3- и 1$-антигены)
3.3. Роль РИД с О-ПС антигеном в комплексной дифференциальной поствакцинальной диагностике бруцеллеза крупного рогатого скота

3.4. Результаты изучения нестандартных ситуаций при использовании различных средств и методов дифференциальной диагностики для эпизоотической оценки по бруцеллезу стад крупного рогатого скота, привитого живой вакциной из слабоагглютиногенного штамма
В. abortus
3.5. Эффективность схемы дифференциальной поствакциналь-ной диагностики в системе эпизоотологического мониторинга при бруцеллезе крупного рогатого скота
4. ЗАКЛЮЧЕНИЕ
5. ВЫВОДЫ
6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
7. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
8. ПРИЛОЖЕНИЕ

1. ВВЕДЕНИЕ
Усовершенствование системы контроля эпизоотического процесса бруцеллеза остается для ветеринарной науки и практики до сих пор важнейшей проблемой.
Особенно актуально это в связи с тем, что, с одной стороны, постоянно разрабатываются новые методы диагностики и специфической профилактики инфекционных болезней животных, с другой - резко изменяются эпизоотические и социально-экономические условия ведения животноводства (Е.С.Орлов, 1967; П.А.Три-ленко, 1976; Г.А.Объедков, 1986; А.А.Новицкий, 1989; И.А.Коси-лов, 1992; С.К.Димов, 1993; С.И.Джупина, 1994, А.Г.Падалица с соавт., 1997 и др.).
В управлении эпизоотическим процессом бруцеллеза важная роль принадлежит средствам специфической профилактики с рациональными схемами их использования.
Так, было установлено, что высокой противоэпизоотической эффективностью обладают схемы реиммунизации крупного рогатого скота живой вакциной из слабоагглютиногенного штамма В. abortus 82 либо по гомологичному фону, либо по фону первичной прививки живой вакцины из агглютиногенного штамма В.abortus 19 с интервалом 1-2 года. Наряду с этим была доказана необходимость использования в неблагополучных стадах рациональной поствакци-нальной диагностики, обеспечивающей максимальную реализацию провоцирующих свойств вакцин в ранние сроки после прививок.
Особое значение в этой связи приобретает эпизоотологичес-кий мониторинг, представляющий собой систему наблюдений, анализа, оценки и прогноза изменений эпизоотической ситуации.

ной оценкой характера указанных серологических реакций у привитых вакциной из штамма 82 животных.
При постановке серологических реакций (РСК, РА) использовали единый биофабричный 3-антиген и бруцеллезные И-антигены (РСК) ВНЙИБТЖ (Л.В.Дегтяренко) и ВНИВИ (К.М.Салмаков с со-авт.). В РИГА использовали медицинский эритроцитарный диагнос-тикум, выпускаемый Одесским предприятием по производству бактерийных препаратов.
РИД (реакцию иммунодиффузии или диффузной преципитации) с О-ПС антигеном (В.М.Чекишев с соавт., 1993) выполняли по общепринятой методике на чашках Петри и на стеклянных пластинах различных размеров, в зависимости от количества исследуемых проб. При исследовании 5 проб использовали пластиковые чашки Петри, вложенные в набор, до 11 проб - предметные стекла, до 35 проб - пластинки 6x9 см и т.д.
Для приготовления геля 10 г хлорида натрия и 0,8 г агар-агара заливали дистиллированной водой до 100 мл. Полученную смесь перемешивали на магнитной мешалке и погружали в кипящую водяную баню до полного расплавления агара.
Расплавленный гель фильтровали через ватный фильтр и заливали им стеклянные пластинки или чашки Петри (из расчета -12 мл на стекло размером 6x9 см; 2,5 мл на предметное стекло; 3 мл на пластиковую чашку Петри; 4 мл на крышку пластиковой чашки Петри). После застывания геля в нем пробивали лунки стандартным штампом (вокруг центральной лунки диаметром 3 мм -б лунок диаметром 5 мм).
В периферические лунки с помощью пипетки-дозатора вносили по 40 микролитров (мкл) испытуемых сывороток, а в центральную лунку - 20 мкл 0-ПС антигена. На каждой пластинке ставили по-