Роль фунгитоксичных соединений пшеницы в устойчивости к ржавчине и фузариозу колоса

• Автор: Сидорова, Татьяна Михайловна
• Шифр специальности: 06.01.11
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2001
• Место защиты: Краснодар
• Количество страниц: 105 с. : ил

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Распространенность и вредоносность ржавчинных заболеваний и фузариоза колоса пшеницы
1.2. Роль фунгитоксичных соединений в устойчивости растений к заболеваниям
1.3. Факторы, способствующие накоплению антибиотических соединений
ГДАВ А 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
2.1. Растения, инокуляция, отбор проб
2.2. Выделение и очистка фунгитоксичных соединений
2.3. Обнаружение и оценка;актиЬности фунгитоксичных соединений
2.4. Определение содержания дезоксиниваленола
2.5. Определение активности ферментов
2.6. Изучение природы фунгитоксичных соединений с помощью качественных реакций
2.7. Статистическая обработка результатов исследований
ГЛАВА 3. ВЛИЯНИЕ ФУНГИТОКСИЧНЫХ СОЕДИНЕНИЙ
НА РАЗВИТИЕ РЖАВЧИННЫХ ГРИБОВ И ВОЗБУДИТЕЛЯ ФУЗАРИОЗА КОЛОСА
3.1. Изучение роли фунгитоксичных соединений в устойчивости пшеницы к ржавчине
3.2. Фунгитоксичные соединения и устойчивость растений пшеницы к фузариозу колоса
ГЛАВА 4. КРИТЕРИИ УСТОЙЧИВОСТИ РАСТЕНИИ ПШЕНИЦЫ К ФУЗАРИОЗУ КОЛОСА
4.1. Комплексная система выявления сортов пшеницы, устойчивых
к фузариозу колоса
4.2. Влияние фунгитоксичных соединений на контаминацию зерна фузариотоксинами
ГЛАВА 5. ИЗУЧЕНИЕ ВОЗМОЖНЫХ ПУТЕЙ БИОСИНТЕЗА
ФУНГИТОКСИЧНЫХ СОЕДИНЕНИЙ В РАСТЕНИЯХ ПШЕНИЦЫ
5.1. Влияние заражения растений пшеницы ржавчинными грибами
и Б. §гатшеагшп на активность гидролитических ферментов
5.2. Влияние заражения растений пшеницы ржавчинными грибами
и Б. grammearum на активность фенилаланинаммиаклиазы
5.3. Изучение возможных путей образования предшественников фунгитоксичных соединений фенольной природы
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЯ
ВВЕДЕНИЕ

Наибольший ущерб урожаю пшеницы в большинстве регионов ее возделывания наносят заболевания, вызываемые ржавчинными грибами, Fusarium graminearum и некоторые другие. Высокая концентрация посевов колосовых культур и благоприятные погодные условия предрасполагают к частым и вредоносным вспышкам возбудителей заболеваний в последние годы в ряде районов страны (Санин С.С. и др., 1999). Это обстоятельство обусловило повышенное внимание многих исследователей к изучению самых различных аспектов патогенеза с целью разработки эффективных приемов снижения потерь урожая.
Наиболее действенным средством защиты от болезней является введение в культуру устойчивых сортов, использование рациональных систем агротехники и применение средств защиты. Только селекционные и агротехнические мероприятия радикально не решают проблему - в природе постоянно возникают новые генетические биотипы патогена, способные поражать ранее устойчивые и созданные в результате больших усилий сорта. Новый сорт сохраняет свою устойчивость не более 5-8 лет (Шопина В.В., 1971; Кривченко В.И., 1982), после чего теряет это ценное качество.
Решение проблемы борьбы с заболеваниями путем применения химических средств защиты растений может быть достигнуто лишь при наличии высокоэффективных, дешевых и совершенно безвредных фунгицидов.
Существующие в настоящее время химические препараты не могут вполне надежно обеспечить защиту урожая от заболеваний. Систематическое же применение недостаточно эффективных фунгицидов может способствовать появлению адаптивных изменений у фитопатогенных грибов и приводить к возникновению резистентности к фунгицидам. И только изучение особенностей взаимодействия растения-хозяина и патогена будет способст-

2.3. Обнаружение и оценка активности фунгитоксичных соединений
Биоавгография с использованием гриба С1ас1озролит сиситеппит. Подготовленные для анализа хроматографические пластины пропитывали дрожжевым питательным раствором, 1 л которого содержит 50 г маннита, 50 г сахарозы, 5,4 г янтарной кислоты, 3 г дрожжевого экстракта, 0,1 г КН2Р04, 0,3 г М§Б04 , 10 мг Бе804 , 4,4 мг гпБОд , pH 5,4. Мицелий гриба гомогенизировали с небольшим количеством питательного раствора. Полученной суспензией равномерно опрыскивали пропитанные хроматографические пластины, которые помещали во влажную камеру.Инкубацию вели 3-е сут при 25°С. Пластины покрывались черно-зеленым налетом мицелия гриба. Вещества, обладающие фунгитоксичным действием, выявляются на этом фоне в виде незаросших грибом белых зон, по размеру которых можно судить о величине антигрибной активности соединений.
Биоавтография с использованием гриба Б. егаттеаплт. Хроматографические пластины пропитывали картофельно-глкжозной питательной средой, которую готовили следующим образом: 200 г картофеля измельчали и кипятили в 0,5 л воды в течение 30 мин. Полученный экстракт отфильтровывали через бязь и добавляли 20 г глюкозы. Мицелий гриба Бщгапппеагит растирали с питательной средой, пропитанные хроматограммы равномерно опрыскивали полученной суспензией. Пластины помещали во влажную камеру, инкубировали четверо суток при температуре 28°С. Поверхность пластины зарастала коричнево-красным налетом, места расположения фунгитоксичных соединений не зарастали или зарастали в меньшей степени. Измеряли площадь зон ингибирования роста гриба, по величине которой судили о фунги-токсичной активности соединения.
Подавление прорастания урединиоспор ржавчинных грибов. Каждую зону с определенной хроматографической подвижностью элюировали мета-