Изменение метаболизма молоди дальневосточных лососей при смене среды обитания

• Автор: Григорьева, Юлия Владимировна
• Шифр специальности: 03.00.32
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2006
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 131 с. : ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ.
ВВЕДЕНИЕ.

Глава I. Материал и методы.

1.1. Биологическая характеристика материала

1.2. Определение общего биохимического состава.

Глава II. Особенности биологии и смолтификации молоди

дальневосточных лососей обзор литературы

II. 1. Систематическое положение и особенности биологии кижуча

Опсогкупскш кБШск V, кеты Опсогкупскш кеа V и горбуши Опсогкупскш V

.2. Смолтификация молоди дальневосточных лососей.

.2.1. Изменение обмена веществ у молоди лососевых рыб при

смолтификации.
.2.2. Особенности осморегуляции молоди кижуча
.2.3. Особенности осморегуляции молоди кеты и горбуши
Глава III. Влияние пересадки в морскую воду на изменение массы рыб
и содержание глюкозы в крови у смолтов дальневосточных
лососей
III. 1. Изменение массы и содержание глюкозы у смолтов кеты и
молоди кижуча при пересадке в морскую воду
.2. Особенности осморегуляции у переростков молоди кеты после
длительного выдерживании их в пресной воде
III. 3. Особенности осморегуляции у молоди кеты и горбуши при
частично нерезорбированном желточном мешке
Глава IV. Изменение биохимического состава накормленной и
голодной молоди горбуши при смене среды обитания
Глава V. Подбор кормов с целью ускорения смолтификации
сеголетков кижуча.
V. 1. Биохимический состав тканей сеголеток кеты и кижуча
V.2. Оценка влияния кормов с разным содержанием углеводов на
смолтификацию сеголеток кижуча.
V.3. Локализация гликогена в теле молоди кижуча в зависимости
от состава потребляемого корма.
V.4 Длительность расходования углеводов при голодании после
потребления кормов с различным содержанием углеводов
V.5 Влияние морской среды на кижучей, выращенных на кормах
с повышенным содержанием углеводов
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ


Одновременно из этих партий рыб, которых ранее кормили кормом с разным вариантом их состава, помещали по 5 шт. Для косвенного определения уровня накопления гликогена в тканях по величине выброса глюкозы в кровоток рыбам инъецировали 0,1 раствор адреналина гидрохлорид по 0,5 мл на особь. Через один час после инъекции осуществляли определение глюкозы. Рыб в процессе эксперимента в емкостях с морской водой выдерживали голодными, и только часть кормили живыми энхитреями для выявления готовности сеголеток кижуча к смолтификации после кормления в пресной воде кормом 4 с добавлением в него печени. Объем собранного и обработанного материала представлен в таблице 2. Таблица 2. Объем исследованного материала. Область исследования, объект Число рыб, экз. В процессе проведения экспериментов молодь из пресной и морской воды периодически взвешивали с точностью до 0,1 г, перед взвешиванием молодь в сачке встряхивали 5 раз для удаления воды из ротовой и жаберной полостей. Для изучения биохимического состава тела экспериментальных рыб их замораживали целиком при температуре С и доставляли в Москву, где обрабатывался на базе биохимической лаборатории МПГУ. В лаборатории от охлажденной тушки мальков отделяли печень, которую использовали для определения содержания в ней глюкозы и гликогена. Определение содержания глюкозы в печени и мышцах проводили ортотолуидиновым методом Шатуновский, Вельтицева, . К 1 мл надосадочной жидкости прибавляли 3 мл ортотолуидинового реактива и помещали смесь на минут в равномерно кипящую водяную башо. Затем жидкость охлаждали и фотометрировали на спектрофотометре СФ при длине волны 0 нм. Количество глюкозы в пробе находили с помощью калибровочной кривой, для построения которой использовали растворы глюкозы с концентрацией от 0, до 0,7 мгмл рис. Рисунок 1. Калибровочная кривая для определения свободной глюкозы по ортотолуидиновому методу. В полевых условиях у экспериментальных рыб определяли содержание глюкозы в крови с помощью глюкометра i . Кровь у сеголеток кеты и кижуча брали из хвостовой артерии сразу же после отрезания хвостового стебля. Определение количества гликогена в печении и мышцах проводили колориметрическим орциновым методом по Хорейши Шатуновский, Вельтицева, . Навеску ткани гидролизовали в ном растворе гидроксида натрия на кипящей водяной бане. Гликоген осаждали этанолом с последующим отделением на центрифуге К при оборотовмин в течение минут. Полученный осадок растворяли в воде, добавляли ный раствор серной кислоты и 1ный раствор орцина. С, затем охлаждали. Интенсивность окрашивания определяли на спектрофотометре СФ при длине волны 0 нм. В качестве контроля использовали коммерческий препарат гликогена фирмы Биолар. В количество взятой для анализа ткани в г. Определение общего биохимического состава тушки личинок и мальков лососевых рыб без головы и внутренностей осуществляли в соответствии со схемой, представленной на рисунке 2. Экстракцию липидов из сырой ткани проводили смесью хлороформметанол по методу Фолча Ро1сЬ а1. В.И. Лапина, Е. Г.Черновой Лапин, Чернова, . Пробы личинок и мальков помещали в стеклянные флаконы и заливали 5кратным объемом хлороформметаноловой смеси 2 части хлороформа и 1 часть метанола. Далее образцы фильтровали через бумажный фильтр, жидкую фазу собирали в мерную пробирку, а твердую помещали в ступку и дважды экстрагировали из нее дополнительные количества липидов смесью хлороформметанол. К объединенному хлороформметаноловому экстракту добавляли необходимое количество воды, чтобы соотношение хлороформметанолвода было равно 111 и оставляли на часа, в течение которых достигается наиболее полное извлечение липидов хлороформом, а метанол и другие примеси диффундируют в воду. Жидкая фаза в мерной пробирке разделялась на 2 слоя нижний хлороформенный, содержащий липиды, а верхний воднометаноловый, содержащий все нелипидные фракции. Содержание липидов определяли весовым методом в хлороформенной фракции после ее выпаривания и последующего высушивания до постоянного веса при 5С.