+
Действующая цена700 499 руб.
Товаров:
На сумму:

Электронная библиотека диссертаций

Доставка любой диссертации в формате PDF и WORD за 499 руб. на e-mail - 20 мин. 800 000 наименований диссертаций и авторефератов. Все авторефераты диссертаций - БЕСПЛАТНО

Расширенный поиск

Выделение и характеристика ДНК-полимеразы δ из яйцеклеток и эмбрионов костистой рыбы вьюн (Misgurnus fossilis L. )

Выделение и характеристика ДНК-полимеразы δ из яйцеклеток и эмбрионов костистой рыбы вьюн (Misgurnus fossilis L. )
  • Автор:

    Дмитриева, Светлана Борисовна

  • Шифр специальности:

    03.00.30

  • Научная степень:

    Кандидатская

  • Год защиты:

    2003

  • Место защиты:

    Москва

  • Количество страниц:

    120 с.

  • Стоимость:

    700 р.

    250 руб.

до окончания действия скидки
00
00
00
00
+
Наш сайт выгодно отличается тем что при покупке, кроме PDF версии Вы в подарок получаете работу преобразованную в WORD - документ и это предоставляет качественно другие возможности при работе с документом
Страницы оглавления работы
"Активные формы кислорода ОН, , Н2, перекиси и радикалы липидов, окись азота, то есть молекулы, в которых он неполностью восстановлен, приводят к повреждению оснований, дезоксирибозы и индукции новых ковалентных связей сшивок i, . Последовательности в ДНК являются горячими точками окислительных повреждений, при этом образуется модифицированное производное гуанина 8оксогуанин 8x i . При дефекте в репаративной системе клетки пара 8x замещается парой ТА, что приводит к изменению контекста генетической информации. Если в обеих цепях ДНК апуриновые или апиримидмновые участки АРсайты располагаются друг против друга или фрагментация дезоксирибозы произошла вблизи, то появляются двунитевые разрывы ДНК vi . Продуктом повреждений, вызванных уоблучением, часто является фрагментированный или окисленный АРсайт. Вполне понятно, что для устранения столь обширного разнообразия повреждений в ДНК требуются различные механизмы. В настоящее время известно несколько основных типов репарации ядерной ДНК эукариот. Эксцизионная репарация эксцизионная репарация основания и эксцизионная репарация нуклеотидного остатка. Первая характерна для устранения модифицированных оснований, АРсайтов и одноцепочечных разрывов ДНК, вторая для устранения неспаренных нуклеотидных остатков и пиримидиновых димеров , , . Необходимым условием восстановления изначальной первичной структуры дуплекса путм эксцизионной репарации является наличие информации интактной комплементарной цепи, считываемой репаративными ДНКполимеразами. В этом случае повреждение удаляется, а образовавшаяся в результате вырезания брешь заполняется ДНКполимеразой в ходе реиаративного синтеза, после чего разрыв в цепи ДНК лигируется. Репарация двухцепочечных разрывов ДНК. Существуют два пути репарации двухцепочечных разрывов ДНК гомологичная рекомбинация при наличии последовательности ДНК, комплементарной разорванным концам, и соединение негомологичных концов . Репарация межцепочечных сшивок ДНК. Следует отметить, что ряд повреждений клетка способна удалять из ДНК путм прямой реактивации. Типичные ферменты такой репарации ДНКфотолиаза бактерий, которая способна расшивать циклобутановое кольцо пиримидинового димера, и т0ДНК. Прямая реактивация повреждений в ДНК не нуждается в участии реиаративных ДНКполимераз, поэтому она не рассматривается детально в этом обзоре для дополнительной информации см. Эксцизионная репарация основания ЭРО. Существуют данные об ЭРО, связанной с застраиванием однонуклеотидной бреши, что обычно наблюдается в случаях образования нормального АРсайта i, и ЭРО, в ходе которой ДИКполимеразы заполняют брешь из нескольких до нуклеотидов i, зачастую связанной с репарированием аномального АРсайта i, . Д1I, застраивающий брешь 5 зашивание разрыва ДНКлигазой. Так как сайты образуются достаточно часто в клетке вследствие спонтанной или индуцированной потери основания, интересной представляется идентификация ферментов, эффективно обеспечивающих репарацию данного типа. Были предприняты попытки установить, какие из известных ДНКполимераз способны участвовать в эксцизионной репарации пары синтетического олигомера iv . Показано, что такой тип неправильного спаривания в экстрактах клеток Е. ДНКполимеразой , на что указывает ингибиторный анализ с использованием афидиколина, 2 и . Так как репарация сопровождалась образованием однонуклеотидной бреши, авторы предположили, что удаление происходи при помоши не экзонуклеазы, а дезоксирибофосфодиестеразы. Участие ДНКполимеразы в ЭРО подтверждено в экспериментах по реконструкции системы репарации i vi с использованием клеток семенников быка i , . В грубом ядерном экстракте репарация пары подавлялась поликлональными антителами к ДНКполимеразе и ее 8кДа домену, а также при полном исключении из среды . Правильная замена нуклеотида происходила при внесении препаративно очищенной ДНКполимеразы в реакционную смесь, содержащую частично очищенные компоненты фракций, обладающие урацилДНКгликозилазной, АРэндонуклеазной и лигазной активистами. Практически никакой активности в данной системе не проявляли ДНКполимеразы 5 или е. Активные формы кислорода ОН, , Н2, перекиси и радикалы липидов, окись азота, то есть молекулы, в которых он неполностью восстановлен, приводят к повреждению оснований, дезоксирибозы и индукции новых ковалентных связей сшивок i, . Последовательности в ДНК являются горячими точками окислительных повреждений, при этом образуется модифицированное производное гуанина 8оксогуанин 8x i . При дефекте в репаративной системе клетки пара 8x замещается парой ТА, что приводит к изменению контекста генетической информации. Если в обеих цепях ДНК апуриновые или апиримидмновые участки АРсайты располагаются друг против друга или фрагментация дезоксирибозы произошла вблизи, то появляются двунитевые разрывы ДНК vi . Продуктом повреждений, вызванных уоблучением, часто является фрагментированный или окисленный АРсайт. Вполне понятно, что для устранения столь обширного разнообразия повреждений в ДНК требуются различные механизмы. В настоящее время известно несколько основных типов репарации ядерной ДНК эукариот. Эксцизионная репарация эксцизионная репарация основания и эксцизионная репарация нуклеотидного остатка. Первая характерна для устранения модифицированных оснований, АРсайтов и одноцепочечных разрывов ДНК, вторая для устранения неспаренных нуклеотидных остатков и пиримидиновых димеров , , . Необходимым условием восстановления изначальной первичной структуры дуплекса путм эксцизионной репарации является наличие информации интактной комплементарной цепи, считываемой репаративными ДНКполимеразами. В этом случае повреждение удаляется, а образовавшаяся в результате вырезания брешь заполняется ДНКполимеразой в ходе реиаративного синтеза, после чего разрыв в цепи ДНК лигируется. Репарация двухцепочечных разрывов ДНК. Существуют два пути репарации двухцепочечных разрывов ДНК гомологичная рекомбинация при наличии последовательности ДНК, комплементарной разорванным концам, и соединение негомологичных концов . Репарация межцепочечных сшивок ДНК. Следует отметить, что ряд повреждений клетка способна удалять из ДНК путм прямой реактивации. Типичные ферменты такой репарации ДНКфотолиаза бактерий, которая способна расшивать циклобутановое кольцо пиримидинового димера, и т0ДНК. Прямая реактивация повреждений в ДНК не нуждается в участии реиаративных ДНКполимераз, поэтому она не рассматривается детально в этом обзоре для дополнительной информации см. Эксцизионная репарация основания ЭРО. Существуют данные об ЭРО, связанной с застраиванием однонуклеотидной бреши, что обычно наблюдается в случаях образования нормального АРсайта i, и ЭРО, в ходе которой ДИКполимеразы заполняют брешь из нескольких до нуклеотидов i, зачастую связанной с репарированием аномального АРсайта i, . Д1I, застраивающий брешь 5 зашивание разрыва ДНКлигазой. Так как сайты образуются достаточно часто в клетке вследствие спонтанной или индуцированной потери основания, интересной представляется идентификация ферментов, эффективно обеспечивающих репарацию данного типа. Были предприняты попытки установить, какие из известных ДНКполимераз способны участвовать в эксцизионной репарации пары синтетического олигомера iv . Показано, что такой тип неправильного спаривания в экстрактах клеток Е. ДНКполимеразой , на что указывает ингибиторный анализ с использованием афидиколина, 2 и . Так как репарация сопровождалась образованием однонуклеотидной бреши, авторы предположили, что удаление происходи при помоши не экзонуклеазы, а дезоксирибофосфодиестеразы. Участие ДНКполимеразы в ЭРО подтверждено в экспериментах по реконструкции системы репарации i vi с использованием клеток семенников быка i , . В грубом ядерном экстракте репарация пары подавлялась поликлональными антителами к ДНКполимеразе и ее 8кДа домену, а также при полном исключении из среды . Правильная замена нуклеотида происходила при внесении препаративно очищенной ДНКполимеразы в реакционную смесь, содержащую частично очищенные компоненты фракций, обладающие урацилДНКгликозилазной, АРэндонуклеазной и лигазной активистами. Практически никакой активности в данной системе не проявляли ДНКполимеразы 5 или е.




Активные формы кислорода ОН, , Н2, перекиси и радикалы липидов, окись азота, то есть молекулы, в которых он неполностью восстановлен, приводят к повреждению оснований, дезоксирибозы и индукции новых ковалентных связей сшивок i, . Последовательности в ДНК являются горячими точками окислительных повреждений, при этом образуется модифицированное производное гуанина 8оксогуанин 8x i . При дефекте в репаративной системе клетки пара 8x замещается парой ТА, что приводит к изменению контекста генетической информации. Если в обеих цепях ДНК апуриновые или апиримидмновые участки АРсайты располагаются друг против друга или фрагментация дезоксирибозы произошла вблизи, то появляются двунитевые разрывы ДНК vi . Продуктом повреждений, вызванных уоблучением, часто является фрагментированный или окисленный АРсайт. Вполне понятно, что для устранения столь обширного разнообразия повреждений в ДНК требуются различные механизмы. В настоящее время известно несколько основных типов репарации ядерной ДНК эукариот. Эксцизионная репарация эксцизионная репарация основания и эксцизионная репарация нуклеотидного остатка. Первая характерна для устранения модифицированных оснований, АРсайтов и одноцепочечных разрывов ДНК, вторая для устранения неспаренных нуклеотидных остатков и пиримидиновых димеров , , . Необходимым условием восстановления изначальной первичной структуры дуплекса путм эксцизионной репарации является наличие информации интактной комплементарной цепи, считываемой репаративными ДНКполимеразами. В этом случае повреждение удаляется, а образовавшаяся в результате вырезания брешь заполняется ДНКполимеразой в ходе реиаративного синтеза, после чего разрыв в цепи ДНК лигируется. Репарация двухцепочечных разрывов ДНК. Существуют два пути репарации двухцепочечных разрывов ДНК гомологичная рекомбинация при наличии последовательности ДНК, комплементарной разорванным концам, и соединение негомологичных концов . Репарация межцепочечных сшивок ДНК. Следует отметить, что ряд повреждений клетка способна удалять из ДНК путм прямой реактивации. Типичные ферменты такой репарации ДНКфотолиаза бактерий, которая способна расшивать циклобутановое кольцо пиримидинового димера, и т0ДНК. Прямая реактивация повреждений в ДНК не нуждается в участии реиаративных ДНКполимераз, поэтому она не рассматривается детально в этом обзоре для дополнительной информации см. Эксцизионная репарация основания ЭРО. Существуют данные об ЭРО, связанной с застраиванием однонуклеотидной бреши, что обычно наблюдается в случаях образования нормального АРсайта i, и ЭРО, в ходе которой ДИКполимеразы заполняют брешь из нескольких до нуклеотидов i, зачастую связанной с репарированием аномального АРсайта i, . Д1I, застраивающий брешь 5 зашивание разрыва ДНКлигазой. Так как сайты образуются достаточно часто в клетке вследствие спонтанной или индуцированной потери основания, интересной представляется идентификация ферментов, эффективно обеспечивающих репарацию данного типа. Были предприняты попытки установить, какие из известных ДНКполимераз способны участвовать в эксцизионной репарации пары синтетического олигомера iv . Показано, что такой тип неправильного спаривания в экстрактах клеток Е. ДНКполимеразой , на что указывает ингибиторный анализ с использованием афидиколина, 2 и . Так как репарация сопровождалась образованием однонуклеотидной бреши, авторы предположили, что удаление происходи при помоши не экзонуклеазы, а дезоксирибофосфодиестеразы. Участие ДНКполимеразы в ЭРО подтверждено в экспериментах по реконструкции системы репарации i vi с использованием клеток семенников быка i , . В грубом ядерном экстракте репарация пары подавлялась поликлональными антителами к ДНКполимеразе и ее 8кДа домену, а также при полном исключении из среды . Правильная замена нуклеотида происходила при внесении препаративно очищенной ДНКполимеразы в реакционную смесь, содержащую частично очищенные компоненты фракций, обладающие урацилДНКгликозилазной, АРэндонуклеазной и лигазной активистами. Практически никакой активности в данной системе не проявляли ДНКполимеразы 5 или е.

Рекомендуемые диссертации данного раздела

Время генерации: 0.087, запросов: 966