Экологические аспекты влияния низкоинтенсивного импульсного лазерного излучения на митотическую рекомбинацию и суперэкспрессию некоторых морфологических признаков Drosophila melanogaster

• Автор: Балакина, Евгения Евгеньевна
• Шифр специальности: 03.00.16, 03.00.01
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2006
• Место защиты: Калуга
• Количество страниц: 233 с. : ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ
Введение

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Механизмы взаимодействия низкоинтенсивного лазерного излучения НЛИ с молекулярными структурами клетки и модификация генетических эффектов .

1.1 Л. Резонансное фотоакцепторное поглощение энергии

низкоинтенсивного лазерного излучения НЛИ

1 Л.2. Нелинейные формы абсорбции излучения инфракрасной ИК

области спектра

1.1.3. Каскад тем новых биохимических реакций в клетках при

лазерной экспозиции .

1.1.4. Биоэффективность импульсного воздействия в зависимости от параметров облучения
1.2. Основные характеристики процесса митотической рекомбинации как источника генетической изменчивости в
митотически делящихся клетках
1.2.1. Временные рамки осуществления митотической рекомбинации
1.2.2. Современные представления о механизмах соматического кроссинговера.
1.2.3. Влияние абиотических факторов на частоту митотической рекомбинации.
Глава 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
2.1. Объекты исследования и условия проведения опытов
2.2. Гены маркеры X хромосомы i ,
используемые в работе
2.3. Схемы разработанных экспериментов.
2.4. Условия экспозиций низкоинтенсивным импульсным лазерным излучением.
2.5. Статистическая обработка данных.
Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
3.1. Модификация частоты митотической рекомбинации при
воздействии НИЛИ на имаго различных генотипов .
3.1.1. Экспериментальные исследования с облучением самок
имаго генотипических структур , .
3.1.2. Экспериментальные исследования на генотипических структурах с облучением самок, самцов и обеих
родительских форм
3.1.3. Экспериментальные исследования с использованием генотипической структуры .
3.2. Флуктуации частот митотической рекомбинации в условиях
экспозиции личинок .
3.2.1. Частота рекомбинационных событий в районе расположения генов СТ
3.2.2. Частота митотического синапсиса в дистальных районах
X хромосомы .
3.3. Отрицательная интерференция в соматическом кроссинговере.
3.4. Влияние различной частоты посылки импульсов на уровень
суперэкспрессии макрохет i .
3.5. Морфозы и гинандроморфы как отклонения в индивидуальном
развитии организма
Глава 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
4.1. Потенциальные механизмы биоэффективности
электромагнитного излучения инфракрасного диапазона
4.2. Иизкоинтенсивное лазерное излучение и митотическая
рекомбинация .
4.3. Изменения паттерна экспрессии гена .
4.4. Дозовая зависимость биоэффективности импульсного
лазерного излучения.
Выводы
Литература


Ю. и др. Изменения активности ферментов носят фазный характер, скорость и сила проявления реакции зависит от длины волны, величины энергетической и временной экспозиции ИЛИ. Прекращение облучения обусловливает восстановление активности ферментов до исходного уровня. Так сверхпороговый уровень 0 мДжсм индуцировал статистически достоверное снижение активности М 2АТФазы на 5 дней, а на пороговом и подпороговом уровнях лишь на десятый день и второй месяц воздействия Коновалов Е. П. и др. Са хлортетрациклин мембрана Дсвятков Н. Д. и др. Са2 связывающей способности мембран. К кратковременному повышению концентрации ионизированного Са в цитоплазме с одновременной стимуляцией действия кальциевых насосов, как и в случае фибробластов китайского хомячка Шевченко А. С. и др. ИК ЛИ Коростелева Ю. Ф. и др. ИЛИ 2,8 нм увеличивало потоки Са2 как в клетку Шевченко А. С. и др. Са2гомеостаз. При этом излучение может влиять не только на сам процесс транспорта и мобилизации Са , но и модифицировать активность кальций зависимых мембранных белков к Са2 Гапеев А. Б. и др. Са2 каналов Олесин А. И. и др. Являясь одним из универсальных внутриклеточных посредников регуляции метаболизма Шевченко А. С. и др. Смирнов В. Г., , являясь стабилизирующим фактором мембран Девятков Н. Д. и др. Са2 запускает наряду с другими ионами целый каскад последующих реакций в клетке. При 00 нм в мембранах эритроцитов БЛОК отмечено уменьшение плотности Ыа каналов с одновременной активацией ЫаК АТФазы. НеЫе облучение кар диомиоцитов, нейронов, глиальных клеток сопровождается активацией токов через АТФзависимые Кканалы Гончарова Л. Л. и др. Самойлов Н. Г., Кару Т. Й., . А.Т. Гикулев и др. ЫаКАТФазы проявляют большую чувствительность к ЛИ по сравнению с 12АТФазой. В.И. Древаль выявил стабилизирующее действие ионов Са2 и на Са2АТФазу и АТФ, а также на М2АТФазу при воздействии ионизирующего излучения, за счет присоединения лиганд иековалентной связью к активному центру фермента, что изменяет структуру белка. С конформационпыми изменениями белковых молекул, за счет реорганизации дисульфидных мостиков без разрушения их первичной структуры, Пикулев А. Т. и др. АТФаз. После экспозиции ИЛИ осуществляется стимуляция аденилатциклазной активности и увеличение концентрации цАМФ Гапеев А. Б. и др. Кару Т. Ченцов Ю. С., повышается каталитическая активность лактатдегидрогеназы, сукцинагдегидрогеназы, ацетилхолинэстеразы, каталазы и других, энергетически важных энзимов Коновалов Е. П. и др. Лохматова С. А., Самойлов Н. Г., наблюдается стимуляция аитиоксидантной системы АОС глутатионрсдуктазы ГР, глюкозо 6 фосфатдегидрогеназы Г6ФДГ, сохраняющих определенный уровень восстановленности сульфгидрильных групп белков ферментов, рецепторов, гормонов Гончарова Л Л. Салганик Р. И. и др. СОД, которая блокирует образование и накопление оксидантов Ог, II22 и ОН Салганик Р. И. и др. Климанов М. Е. и др. Активация АОС Барбараш О. Л. и др. Брилль Г. Е. и др. Булякова Н. В. и др. Азарова . ., снижает уровень ПОЛ Зубкова С. М., Лаприн И. Б., Девятков Н. Д. и др. Олесин А. И. и др. Зубкова С. М. и др. Климанов М. Е. и др. Однако необходимо учитывать тот факт, что наиболее длительное действие ЛИ может вызвать противоположный эффект, снижение активности низкомолекулярных комплексов АОС, что, в свою очередь, сопряжено со снижением неспецифической резистентности организма и с проявлением повреждающего воздействия ЛИ Зубкова С. М., Лаприн И. Б., Гончарова Л. Л. и др. Одноминутное облучение 2,8 нм, мВт, в течение дня, 23 мВтсм2 кроликов породы шиншилла приводило к сдвигу в сторону восстановительного, а мин окислительного эквивалента. Облучение 2 нм, мин в течение 3 дней, мВтсм2 i viv эпигастральной области крыс повышало ПОЛ мембран эритроцитов и гепатоцитов Павлова Р. Н. и др. ПОЛ сыворотки крови. ИЛИ 0 нм, 0 мДжсм2 снижало ПОЛ на и повышало активность АОС на ,3 Булякова Н. В., Азарова .