Функциональное состояние инсулярного аппарата поджелудочной железы, коры надпочечников и щитовидной железы у бычков при выращивании их на рационах с разной распадаемостью крахмала и протеина

• Автор: Коровяцкий, Александр Михайлович
• Шифр специальности: 03.00.04
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2004
• Место защиты: Боровск
• Количество страниц: 169 с. : ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ
1. ВВЕДЕНИЕ

2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

2.1. Роль эндокринной системы в организме животных

2.2. Особенности метаболизма глюкозы и аминокислот у

жвачных.

2.3. Гормональная регуляция обмена веществ

2.3.1. Инсулин.

2.3.2. Глюкокортикоиды.

2.3.3. Тиреоидные гормоны

2.4. Регуляция секреции инсулина, кортизола и тиреоидных гормонов

2.5. Гормональная регуляция роста и продуктивности
2.5.1. Инсулин.
2.5.2. Глюкокортикоиды.
2.5.3. Тиреоидные гормоны
2.6. Влияние гормонов на качество мясной продукции
2.7. Заключение по обзору литературы
3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
3.1. Материал и методы исследований.
3.1.1. Условия проведения опытов.
3.1.2. Определение концентрации гормонов.
3.1.3. Определение концентрации глюкозы
3.2. Результаты собственных исследований и их обсуждение
3.2.1.Функциональное состояние инсулярного аппарата поджелудочной железы у бычков
3.2.1.1. При разной распадаемости крахмала в рационе
3.2.1.2. При разной распадаемости протеина в рационе
3.2.1.3. При разной распадаемости протеина в условиях хозяйственного рациона.
3.2.2. Функциональное состояние коры надпочечников у
бычков.
3.2.2.1. При разной распадаемости крахмала в рационе
3.2.2.2. При разной распадаемости протеина в рационе
3.2.2.3. При разной распадаемости протеина в условиях хозяйственного рациона.
3.2.3. Функциональное состояние щитовидной железы у бычков
3.2.3.1. При разной распадаемости крахмала в рационе
3.2.3.2. При разной распадаемости протеина в рационе.
3.2.3.3. При разной распадаемости протеина в условиях хозяйственного рациона
3.2.4. Динамика роста и результаты контрольного убоя
животных
3.2.4.1. При разной распадаемости крахмала в рационе
3.2.4.2. При разной распадаемости протеина в рационе
3.2.4.3. При разной распадаемости протеина в условиях хозяйственного рациона
3.2.5. Экономическая эффективность использования рационов с низкой распадаемостыо протеина при доращивании и откорме бычков.
4. ЗАКЛЮЧЕНИЕ.
5. ВЫВОДЫ.
6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.
7. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
8. ПРИЛОЖЕНИЕ.
Сокращения, принятые в работе
ЛТФ аденозинтрифосфорная кислота
ДНК дезоксирибонуклеиновая кислота
НРП не распадающийся в рубце протеин
РНК рибонуклеиновая кислота
РП распадающийся в рубце протеин
см соматомедины
стг соматотропный гормон
тз трийодтиронин
Т4 тироксин
ЭКЕ энергетическая кормовая единица
Р степень достоверности
г коэффициент корреляции
Р 0,
Р 0,
Р 0,
1. ВВЕДЕНИЕ
Эндокринная система наряду с нервной и иммунной является важным элементом системы комплексного контроля функций живого организма, именно ей принадлежит ведущая роль в регуляции механизмов реализации генетического потенциала у животных. В тесном взаимодействии с ними, она оказывает значительное влияние на регуляцию интенсивности и направленности метаболических процессов и потоков субстратов в живом организме.
Значение эндокринной системы в регуляции обмена веществ и реализации генетического потенциала продуктивности показано многими исследователями , , , , , , , 6, 1, 9, 5, 0, 1 и другие. Продолжаются исследования по изучению системы гомеоретического контроля, которая обеспечивает перераспределение субстратов в организме для оптимального обеспечения процессов биосинтеза в тканях, механизмов регуляции синтеза и секреции гормонов в кровь, взаимодействия нервной и эндокринной систем, и гормонов между собой, влияния генетических факторов и питания животных на состояние эндокринных желез.
Актуальность


Микроорганизмы в рубце жвачных используют углеводы для обеспечения своих процессов обмена веществ в результате которых образуются короткоцепочечные жирные кислоты ацетат, пропионат, бутират и др В результате этого при потреблении животными обычных рационов, в кровь из желудочнокишечного тракта поступают незначительные количества углеводов , 9, 7, 7,6. По литературным данным свободных сахаров, до 0 крахмала и фруктозанов распадаются в рубце 2, 5. Некоторое количество углеводов достигает кишечника и переваривается там. Способность к перевариванию в кишечнике олигосахаридов ограниченна и не превышает для крупного рогатого скота 1 кг крахмала в сутки 8. Во всех случаях это обеспечивает энергетические потребности животного не более чем на 0, 6. Потребности организма в глюкозе у жвачных практически полностью на и более, в зависимости от состава рациона обеспечиваются за счет глюконеогенеза 2, 5. В результате ее метаболизма образуются пентозы, глицерофосфат, восстановленные эквиваленты НАДФН2 и НАДН2, необходимые для обеспечения многих процессов в организме 3. Углеводы необходимы также для доставки промежуточных продуктов в цикл трнкарбоновых кислот 5. В условиях малого поступления в организм углеводов у жвачных развились приспособительные механизмы направленные на экономию глюкозы. Так, в печени жвачных отмечается низкая активность гексокиназ и практически не проявляется глюкокиназная активность в результате чего, клетки печени поглощают из крови небольшие количества глюкозы для использования се в реакциях гликолиза. В тоже время уровень синтеза глюкозы в печени высок 7, 8. Кроме того, у жвачных значительно сократился расход глюкозы на энергетические нужды. В отличие от моногастричных у них ацетат является одним из основных энергетических субстратов в организме 8. Так же глюкоза практически не используется для синтеза углеродной цепи жирных кислот в процессах синтеза липидов. Таким образом, достигается экономия глюкозы в синтезе липидов по сравнению с моногастричными животными, которые используют для синтеза липидов глюкозу, а не ацетат. Основным органом, продуцирующим глюкозу в организме жвачных, является печень, кроме того, небольшое количество глюкозы около вырабатывается в почках 6. По другим данным в печени вырабатывается глюкозы, а в почках 4. У жвачных животных интенсивность глюконеогенеза достигает максимальных значений в период после кормления, а минимальных в периоды голодания. У других видов животных наблюдается обратная зависимость между поступлением пищи и интенсивностью глюконеогенеза. Наиболее важным субстратом для глюконеогенеза служит пропионат из рубца. По данным разных исследователей из него может образовываться от 4, 2, 1, до 7, 6 глюкозы. Скорость участия пропионата в синтезе глюкозы находится в прямой зависимости от интенсивности его поступления в кровь. Кроме того, при увеличении потребления печенью пропионата снижается использование других предшественников глюкозы, таких как лактат и пируват 4. Использование пропионата печенью для процессов глюконеогенеза не изменяется под воздействием других метаболитов, в том числе и глюкозы 4. Так же на использование пропионата печенью не влияют гормоны глюкокортикостероиды и глюкагон, основные регуляторы глюконеогенеза 7, 2. Другим важным предшественником глюкозы является глицерол. Основное количество его в теле находиться в комплексе с жирными кислотами в составе резервных липидов. Глицерол освобождается при липолизе и использование его в глюконеогенезе так же линейно связано с концентрацией в плазме крови 3. В обычных условиях из глицерола синтезируется только 5 глюкозы. Однако у голодающих и кетозных животных из него может синтезироваться до глюкозы 2. На овцах и крупном рогатом скоте установлено, что у голодающих животных усиливается протеолиз мышечных белков и, соответственно повышается использование аминокислот для синтеза глюкозы 3. Возможно все аминокислоты кроме лизина, лейцина и таурина являются глюкогенными. Наиболее важными для глюконеогенеза являются аланин и глютамин. В мышцах эти аминокислоты образуются не только при деградации белков, но и вследствие синтеза из других аминокислот. Существует предположение, что из 0 г протеина может образоваться г глюкозы 8.