КОМПЛЕКСНАЯ ДИАГНОСТИКА КЛИНИКО-ЛАБОРАТОРНЫХ И МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫХ ИЗМЕНЕНИЙ ПРИ ЖЕЛЧНОМ ПЕРИТОНИТЕ(экспериментальное исследование)

• Автор: Лайпанов, Алий Магометович
• Шифр специальности: 14.01.17
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2010
• Место защиты: Краснодар
• Количество страниц: 120 с. : 14 ил.

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ

АФК - активные формы кислорода

ВНСММ - вещества низкой и средней молекулярной массы

ДВС — диссеминированный внутрисосудистый синдром свертывания

ЖП - жёлчный перитонит

ИТ - индекс токсичности

К+ - катион калия

ЛИИ - лейкоцитарный индекс интоксикации

№і+ - катион натрия

МПО - миелопероксидаза

НГ - нейтрофильный гранулоцит
ОБ - общий белок
ОКА - общая концентрация альбумина
ОС - окислительный стресс
ОСМ - осмолярность
ОЦК - объём циркулирующей крови
ПОЛ - перекисное окисление липидов
РА - резерв альбумина
РСА - резерв связывающей способности альбумина
СРО - свободнорадикальное окисление
ССВР - синдром системной воспалительной реакции
СТ4 - свободный тироксин
СГ— анион хлора
Тр - тромбоциты
ТТГ - тиреотропный гормон
ТТЗ - общий трийодтиронин
ТТ4 -общий тироксин
ЦвП - цветовой показатель
ЭИ - эндогенная интоксикация
ЭКА - эффективная концентрация альбумина
Ш - гематокрит

СОДЕРЖАНИЕ

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ
ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1. СОВРЕМЕННЫЕ ВЗГЛЯДЫ НА ЭТИОЛОГИЮ,
ПАТОГЕНЕЗ, КЛИНИКУ И ДИАГНОСТИКУ ЖЕЛЧНОГО ПЕРИТОНИТА (обзор литературы).
1.1. Медико-социальная проблема желчного перитонита
1.2. Современные представления об этиологии и патогенезе 12 желчного перитонита
1.3. Современные представления о морфофункциональных 25 изменениях при желчном перитоните
ГЛАВА 2. ХАРАКТЕРИСТИКА МАТЕРИАЛА И МЕТОДОВ
ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Материал исследования
2.1.1. Характеристика экспериментальных исследований на
животных
2.1.2. Создание .модели экспериментального желчного 30 перитонита
2.2. Методы исследований
2.2.1. Гематологические методы исследований
2.2.2. Исследование неспецифического звена иммунной 32 системы
2.3. Биохимические методы исследования
2.3.1. Определение общего белка 3
2.3.2. Определение общей концентрации альбумина
2.3.3. Исследование белковых фракций
2.3.4. Исследование гормонов надпочечников и щитовидной 33 железы

2.4. Биофизические методы исследования
2.4.1. Определение эффективной концентрации альбумина
2.4.2. Определение электролитов крови
2.5. Физико-химические методы исследования
2.5.1. Определение осмотической проницаемости мембран 34 эритроцитов
2.6. Интегральные методы исследования
2.6.1. Определение лейкоцитарного индекса интоксикации
2.6.2. Определение индекса токсичности
2.6.3. Определение резерва альбумина
2.6.4. Определение резерва связывания альбумина
2.7. Морфологические методы исследований
2.8. Гистохимические методы исследований
2.9. Морфометрические методы исследования
2.10. Приборы, аппараты и вспомогательное оборудование для 37 проведения биохимических исследований, условия проведения анализов
2.11. Контроль качества исследований
2.12. Статистические методы исследования
ГЛАВА 3. ОЦЕНКА МЕТАБОЛИЧЕСКИХ И ГОРМОНАЛЬНЫХ
ИЗМЕНЕНИЙ ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ ЖЕЛЧНОМ ПЕРИТОНИТЕ
3.1. Клиническая и макроскопическая картина 39 экспериментального желчного перитонита
3.2. Состояние неспецифического звена иммунной системы 41 при экспериментальном желчном перитоните
3.3. Состояние эндогенной интоксикации при 44 экспериментальном желчном перитоните

2.6.2. Определение индекса токсичности крови
Для определения индекса токсичности (ИТ) крови использовали
МТ-0КА
формулу:
Индекс токсичности характеризует гидрофобную природу интоксикации организма. В норме индекс токсичности не превышает 0,3-0,5 [Малахова М.Я., 1995].
2.6.3. Определение резерва альбумина
Для изучения потенциальной возможности альбумина к
иммобилизации токсинов был исследован показатель резерва альбумина (РА) по формуле: РА-ОКА-ЭКА [Федоровский Н.М. и соавт., 1998], Единица измерения - г/л.
2.6.4. Определение резерва связывания альбумина
Для определения резерва связывания альбумина (РСА)
использовалась формула:
А К А
РСА=——~Х 100 ОКА

Резерв связывания альбумина характеризует возможность функциональной системы детоксикации деблокировать молекулу альбумина.
2.7. Морфологические методы исследования
Для изучения морфологического материала использовались
биоптаты печени и надпочечников. Материал фиксировали 10% нейтральным формалином, обезвоживали в спиртах возрастающей концентрации и заливали в парафин по методу Б. Ромейс [1953]. Обзорную оценку морфологических изменений проводили на полутонких срезах толщиной 0,5-1 мкм, окрашенных гематоксилин-эозином. Морфологическую картину исследуемых срезов оценивали с помощью