Влияние окислительного стресса на состояние мембран клеток крови и эндотелия сосудов при желчном перитоните перитоните (экспериментальное исследование)

• Автор: Хасаева, Марина Александровна
• Шифр специальности: 14.01.17
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2011
• Место защиты: Краснодар
• Количество страниц: 120 с. : 7 ил.

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ

АЛТ - аланинаминотрансаминаз АСТ - аспартатаминотрансаминаза АФК - активные формы кислорода

ВНСММ - вещества низкой и средней молекулярной массы ГК - главная компонента

ДВС - диссеминированный внутрисосудистый синдром свертывания

ДК - диеновые конъюгаты

ЖКБ - желчнокаменная болезнь

ЖП - жёлчный перитонит

КФК - креатинфосфокиназа

ЛИИ - лейкоцитарный индекс интоксикации

МДА - малоновый диальдегид

ОД - объемная доля
ОС - окислительный стресс
ПОЛ - перекисное окисление липидов
СР - средний размер
СРО - свободнорадикальное окисление
ССВР — синдром системной воспалительной реакции
ССЭ - сорбционная способность эритроцитов
СТЗ - сосудисто-тромбоцитарное звено
ЩФ - щелочная фосфатаза
ЭИ - эндогенная интоксикация
N0 - оксид азота
БН-группы - тиоловые группы

ОГЛАВЛЕНИЕ
СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1. СОВРЕМЕННЫЕ ВЗГЛЯДЫ НА ЭТИОЛОГИЮ И ПАТОГЕНЕЗ ЖЕЛЧНОГО ПЕРИТОНИТА (обзор литературы)
1.1. Медико-социальная проблема желчного перитонита
1.2. Современные представления об этиологии и патогенезе желчного перитонита
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ 2Л. Материал исследования
2ЛЛ. Характеристика экспериментальных исследований на животных
2Л .2. Создание модели 24-часового экспериментального желчного перитонита
2.2. Методы исследований
2.2.1. Гематологические методы исследований
2.2.2. Физико-химические методы исследования
2.2.3. Биохимические методы исследования
2.2.4. Морфологические методы исследований
2.2.5. Гистохимические методы исследований
2.2.6. Морфометрические методы исследования
2.2.7. Приборы, аппараты и вспомогательное оборудование для проведения биохимических исследований, условия проведения анализов
2.2.8. Контроль качества исследований
2.2.9. Статистические методы исследования
ГЛАВА 3. ИССЛЕДОВАНИЕ ДИНАМИКИ РАЗВИТИЯ СОСТОЯНИЯ СИСТЕМНОЙ ВОСПАЛИТЕЛЬНОЙ РЕАКЦИИ ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ ЖЕЛЧНОМ ПЕРИТОНИТЕ
3.1. Клиническая и макроскопическая картина животных при экспериментальном желчном перитоните
3.2. Состояние процессов свободнорадикального окисления при экспериментальном желчном перитоните
3.3. Структурно-функциональное состояние клеточных мембран эритроцитов при экспериментальном желчном перитоните
3.4. Состояние внутриклеточных ферментов крови при экспериментальном желчном перитоните
3.5. Состояние метаболизма оксида азота (нитраты/нитриты) при экспериментальном желчном перитоните
3.6. Состояние сосудисто-тромбоцитарного звена гемостаза при экспериментальном желчном перитоните
3.7. Построение интегральных критериев диагностики
экспериментального желчного перитонита
ГЛАВА 4. МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ И МОРФОМЕТРИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ В ПОЧКАХ ПРИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМ ЖЕЛЧНОМ ПЕРИТОНИТЕ
4Л. Оценка морфофункционального состояния структуры почки при экспериментальном желчном перитоните
4.2. Оценка морфометрических изменений в почках при экспериментальном желчном перитоните ЗАКЛЮЧЕНИЕ ВЫВОДЫ
ЛИТЕРАТУРНЫЙ УКАЗАТЕЛЬ ПРИЛОЖЕНИЕ

2.2. МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
В ходе работы за животными проводили клинические наблюдения, оценивая общее состояние, двигательную активность, отношение к пище, напряженность брюшной стенки при пальпации и др. Кроме того, при лапаротомии определяли макроскопическую картину органов брюшной полости (наличие выпота, характер экссудата, объём, наличие кровоизлияний и фибринозных отложений, перистальтическую активность кишечника и др.).
Для количественной и качественной оценки степени воспалительной реакции использовали следующие методы исследования.
2.2.1. Гематологические методы исследования
2.2.1.1. Определение общего анализа крови проводили на гематологическом анализаторе «Medonic 620» (Швеция). При этом определяли количество эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов, гематокрит (Ht). Дифференцированный подсчет клеток крови проводили путем микроскопии мазков, окрашенных по Романовскому. Для исключения ошибочной интерпретации полученных результатов о росте содержания лейкоцитов, который может быть обусловлен гемоконцентрацией, оценивали как определяемые величины содержания лейкоцитов и их фракций, так и показатели лейкоцитарной системы, нормализованные по гематокриту (Ht) животных контрольной группы.
2.2.1.2. Определение цветового показателя (ЦвП) крови проводили по формуле:
Хгем _ Хэр NzeM Nap ’
где Хгем - найденное количество гемоглобина, ТЧгем - среднепопуляционное количество гемоглобина, Хэр - найденное количество эритроцитов, Nop -среднепопуляционное количество эритроцитов [Меньшиков В.В., 1987].
2.2.1.3. Определение качественного состава лейкоцитов определяли унифицированным методом морфологического исследования форменных