Клинико-микробиологическая оценка применения современных антибактериальных и биокомпозитных материалов при зубосохраняющих операциях

• Автор: Тер-Абрамян, Давид Рубенович
• Шифр специальности: 14.01.14
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2010
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 99 с. : 14 ил.

Оглавление
Введение

Глава 1 - Обзор литературы

1.1. Эпидемиология хронического периодонтита

1.2. Этиология хронического периодонтита

1.3. Патогенез хронического периодонтита

1.4. Клиническая, рентгенологическая и морфологическая картина хронического периодонтита

1.5. Лечение хронического периодонтита

1.6. Применение антисептиков, антибиотиков, остеоинтегрируюших биопрепаратов при хирургическом лечении хронического периодонтита

Глава 2 - Материалы и методы исследования

2.1. Микробиологические методы исследования
2.2. Клинические методы исследования
2.3. Рентгенологические методы исследования
2.4. Хирургическое лечение больных хроническим периодонтитом
2.5. Методы статистической обработки результатов исследования
Глава 3. Характеристика микрофлоры корневых каналов зубов и
околокорневой кости у больных хроническим периодонтитом
3.1. Характеристика микрофлоры корневых каналов у больных хроническим периодонтитом контрольной группы
3.2. Характеристика микрофлоры корневых каналов у больных хроническим периодонтитом основной группы
3.3. Характеристика микрофлоры корневых каналов у больных хроническим периодонтитом основной группы при повторном эндодонтическом лечении
3.4. Характеристика микрофлоры из костной раны у больных с хроническим периодонтитом основной группы

3.5. Лабораторное обоснование эффективности местного применения ряда лекарственных форм при хирургическом лечении хронического
периодонтита
Глава 4. Результаты клинических исследований
4.1. Результаты стандартной резекции верхушки корня зуба у больных контрольной группы
4.2. Результаты хирургического лечения больных основной группы
Обсуждение полученных результатов и заключение
Выводы
Практические рекомендации
Список литературы

Введение
Актуальность темы исследования
Проблема эффективного лечения хронического периодонтита остается одной из важных и актуальных задач в стоматологии. Высокая распространенность хронических форм периодонтита диктует необходимость поиска эффективных методов его лечения. Несмотря на успехи современной эндодонтии, далеко не всегда лечение ведет к регрессу гранулирующих и гранулематозных периапикальных очагов [24,62,79,80,81,152,174]. Сложность и трудоемкость врачебных манипуляций при лечении хронического периодонтита часто приводит к возникновению большого числа осложнений после эндодонтического лечения. Одним из наиболее часто встречающихся осложнений является некачественное пломбирование корневых каналов, что также приводит к формированию очага хронического воспаления в области верхушки корня и возникновению источника хронической одонтогенной инфекции в организме человека [82,102].
Большая распространенность хронического периодонтита, трудности лечения зубов с деструктивными очагами в области верхушек корней зубов являются частой причиной их удаления и, соответственно, формирования вторичной адентии у большого количества пациентов, в том числе и молодого возраста [5,84,100,127,163,174].
В настоящее время, наряду с совершенствованием методов эндодонтического лечения хронического периодонтита, активно внедряются зубосохраняющие операции [14,15,40,59,82,184].
Вместе с тем, для успешного проведения консервативного и хирургического лечения хронического деструктивного периодонтита (зубосохраняющие операции) необходимо учитывать комплекс этиологических факторов, включая основные патогены корневых каналов

б) в анаэробных условиях: Streptococcus sanguis, Prevotella
melaninogenica, Fusobacterium nucleatum (клинические изоляты).
Метод диффузии в плотной питательной среде проводили на чашках Петри с сердечно-мозговым агаром (для аэробных культур) и 5% кровяным гемин-агаром (для анаэробных культур). Содержание агар-агара составляло 1,2%. Предварительно с помощью пробойника в плотной питательной среде делали лунки диаметром 2 мм, в которые, после посева культур, вносили образцы лекарственных форм.
Суточные культуры тест-штаммов аэробных и анаэробных бактерий засевали «сплошным газоном», используя взвесь микробных клеток в физиологическом растворе в концентрации 108 клеток/мл. Затем в лунки помещали одинаковые по объему гранулы коллапана (навеска 10 мг) с соответствующими антибактериальными компонентами и инкубировали в термостате 48 часов при 37°С. Аэробные посевы инкубировали 24 часа при 37°С. Анаэробные посевы инкубировали 48 часов в анаэростате при 37°С. Для культивирования анаэробов использовали безкислородную газовую смесь, содержащую 80% азота, 10% углекислого газа и 10% водорода.
Учет результатов проводили визуально, оценивая диаметр зон торможения роста тест-штамма вокруг лунки с лекарственной формой. Эксперимент с каждой лекарственной формой повторяли 3 раза, определяли среднюю величину и ошибку среднего (М±т).
Кассетный микрометод проводили в стандартных полиацетатных блистерах для упаковки таблетированных лекарственных форм. Использовали кассеты, содержащие 20 лунок объемом 0,5 мл каждая. Гранулы коллапана (100 мг) выдерживали в 1 мл физиологического раствора в течение двух суток при 37°С. За указанное время предположительно проходило растворение антибактериального компонента в физиологическом растворе. Для контроля готовили стандартные растворы, содержащие: метронидазол, линкомицин,