Комбинированная антибиотикопрофилактика местных инфекционно-воспалительных осложнений при операциях на альвеолярном отростке (части) челюсти

• Автор: Яхьяев, Михаил Исакович
• Шифр специальности: 14.01.14
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2011
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 107 с. : 15 ил.

СОДЕРЖАНИЕ
ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Роль микрофлоры полости рта в развитии инфекционных осложнений при операциях в полости рта
1.2. Место антибиотиков в профилактике инфекционновоспалительных осложнений в хирургической стоматологии

1.3. Дефекты челюстных костей и коллагенсодержащис материалы для их замещения

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Характеристика обследованных пациентов и методы клинического обследования

2.2. Микробиологическое исследование

2.3. Определение чувствительности анаэробных бактериальных культур к антибиотикам

2.4. Определение минимальной подавляющей концентрации (МПК) исследуемых антибактериальных препаратов
2.5. Характеристика используемых препаратов и схемы антибиотикопрофилактики
2.6. Методы статистической обработки результатов исследования
ГЛАВА 3. КЛИНИКО-ЛАБОРАТОРНОЕ ОБОСНОВАНИЕ ПРИМЕНЕНИЯ
КОМБИНИРОВАННОЙ АНТИБИОТИКОПРОФИЛАКТИКИ
МЕСТНЫХ ИНФЕКЦИОННО-ВОСПАЛИТЕЛЬНЫХ
ОСЛОЖНЕНИЙ
3.1. Результаты исследования чувствительности выделенных штаммов возбудителей к цефалоспоринам и антибактериальным препаратам других групп
3.2. Сравнительная оценка динамики клинических показателей при использовании комбинированной ангибиотико-профилактики в различных хирургических
стоматологических вмешательствах
3.3. Состав микрофлоры первично контаминированных и инфицированных послеоперационных ран и ее изменения при проведении периоперационной антибиотикопрофилактики
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ
ЛИТЕРАТУРА

ВВЕДЕНИЕ
Актуальность проблемы
Вопрос о проведении антибактериальной профилактики при амбулаторных хирургических операциях в настоящее время является весьма дискутабельным. При проведении операций в условиях так называемых «инфицированных» ран, к которым относится цистэктомия, резекция верхушки корня, гранулемэктомия, проводимая во время обострения процесса, антибиотики, как правило, назначаются системно в послеоперационный период (Т.Г.Робустова с соавт, 1998, 2006; Р.В.Ушаков,
В.Н.Царев, 2005 и др.). Кроме этого, для профилактики инфекционновоспалительных осложнений возможно использование антимикробных препаратов местно — в составе комплексных препаратов или остеотропных средств (например, Колапол, Коллапан с антибиотиками).
Состав микрофлоры при хроническом периодонтите изучен достаточно подробно (А.В.Митронин, 2003-2006). Вместе с тем спектр микроорганизмов при воспалительных осложнениях (например, нагноении радикулярной кисты) до конца не определен, что затрудняет выбор антимикробного препарата для профилактики послеоперационных осложнений и лечения обострения процесса.
В последние годы существенно изменился спектр чувствительности к антибиотикам анаэробных бактерий, вызывающих инфекционно-воспалительные заболевания челюстно-лицевой области (В.Н.Царев, Р.В.Ушаков, 2004). Широкое распространение получила устойчивость к наиболее часто применяемым в стоматологической практике препаратам имидазольного ряда (метронидазолу, нитазолу, орнидазолу, тинидазолу), причём как среди грамположительных неспорообразующих палочек (актиномицеты, пропиони-бактерии, коринебактерии), так и анаэробных кокков. Обычным явлением

стала устойчивость анаэробных штаммов бактерий к линкомицину и клиндамицину. Среди штаммов пародонтопатогенных анаэробных бактерий, циркулирующих в России {Prevotella intermedia, Porphyromonas gingivalis, Aggregatibacter actinomycetemcomitans), выявлены гены резистентности к тетрациклинам и макролидам (эритромицину) с частотой 56,8 и 11,8% соответственно. Другой проблемой является способность многих антибиотиков замедлять процессы регенерации костной ткани, что ограничивает их местное применение.
В стоматологии получили широкое распространение биокомпозитные остеопластические препараты на основе коллагена, в частности Колапол и Коллапан. Вместе с тем при их использовании часто наблюдается неудовлетворительное формирование костной ткани. Отсутствие или снижение эффекта регенерации при проведении костнопластических операций, особенно с использованием материалов, содержащих коллаген, может быть обусловлено присутствием в зоне операции пародонтопатогенных микроорганизмов, которые активно выделяют метталлопротеиназы, в частности коллагенозу.
Таким образом, определение видов микроорганизмов контамини-рованных и инфицированных ран челюстных костей, их чувствительность к антимикробным препаратам и определение путей профилактики распространения инфекции является актуальным.
Цель работы
Разработать тактику комбинированной антибиотикопрофилактики местных инфекционно-воспалительных осложнений после операций на альвеолярном отростке (альвеолярной части) челюсти в условиях первичной микробной контаминации и инфицирования.

секунд. Затем их помещали в транспортную среду Амиеса и доставляли в лабораторию в охлаждённом виде.
Посев материала с целью получения изолированных колоний осуществляли секторальным методом на чашки Петри с 5%-м сердечномозговым гемин-агаром, приготовленным на основе Brain-Heart Agar компании Difco (USA). Данная среда содержит в своем составе факторы роста, такие как гемин (витамин К) и менадион, а также является универсальной для роста большинства анаэробных и аэробных видов бактерий.
Культивирование анаэробных культур бактерий осуществлялось в анаэростате с бескислородной газовой смесью, состоящей из 80 % азота, 10 % водорода, 10 % углекислого газа при температуре 37 °С от 48 часов до 7 дней.
Проводили подсчет количества и идентификацию выросших колоний с использованием бинокулярной лупы и выполняли пересчет на один тампон. Количество бактерий выражали в колонеообразующих единицах (КОЕ). Для удобства из полученного числа рассчитывался десятичный логарифм.
После выделения изолированных колоний и подсчета их количества получали чистые культуры бактерий на скошенном Brain-Heart Agar или полужидкой среде АС. Культивирование в анаэробных условиях проводили до 7 суток, в аэробных - до 3 суток. С помощью комплекса морфологических, культуральных и биохимических признаков устанавливали вид выделенных бактерий. Биохимическую идентификацию чистых культур анаэробных бактерий, стрептококков и грамотрицательных бактерий проводили с помощью тест-систем фирмы API (Франция) и Roche (Германия).
Изолированные колонии дрожжеподобных грибов в аэробных условиях получали, используя среду Сабуро с добавлением ампиокса 2,5 г на 1000 мл. После идентификации полученных изолированных колоний и подсчета их количества на среде Сабуро получали чистые культуры дрожжеподобных