Фармако-токсикологические свойства и эффективность препарата АйСиДивит для профилактики послеродовых осложнений у коров

• Автор: Кугелева, Татьяна Игоревна
• Шифр специальности: 06.02.03
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2011
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 134 с. : ил.

СОДЕРЖАНИЕ
ВВЕДЕНИЕ -

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

ГЛ. Средства повышения неспецифической защиты организма и профилактики послеродовых заболеваний крупного рогатого скота

1.2. Теоретическое обоснование состава препарата АйСиДивит

1.2.1. Фармакологический биостимулятор - антисептик-стимулятор Дорогова (АСД)

1.2.2. Антиоксиданты - витамины А, Е, янтарная кислота

1.2.3. Обоснование выбора лекарственной формы

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материалы и методы

2.2. Результаты исследований

2.2.1. Показатели качества, методы контроля и стабильность препарата в процессе хранения
2.2.2. Фармако-токсикологическая характеристика препарата
2.2.2.1. Специфическая активность
2.2.212. Острая токсичность в опытах на лабораторных животных
2.2.2.3. Субхроническая токсичность в опытах на лабораторных животных
2.2.2.4. Влияние на антитоксическую функцию и массовый коэффициент печени у крыс
2.2.2.5.Местно-раздражающее действие на кожу и слизистые оболочки
2.2.2.6. Аллергизирующее действие
2.2.2.7. Эмбриотоксические и тератогенные свойства
2.2.3 Влияние на физиологическое состояние организма и уровень неспецифической резистентности крупного рогатого скота
2.2.4 Изучение эффективности препарата
2.2.4.1. Определение оптимальной дозы для профилактики задержания последа и послеродовых заболеваний у крупного рогатого скота
2.2.4.2. Эффективность препарата для профилактики послеродовых осложнений у коров
2.2.4.3. Производственное испытание эффективности препарата для профилактики послеродовых осложнений у коров
3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
4. ВЫВОДЫ
5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
6. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
7. ПРИЛОЖЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ
Успешное ведение молочного скотоводства основано на максимальном и рациональном использовании репродуктивного потенциала маточного поголовья. Однако в современных, условиях животные постоянно подвергаются воздействию различных стресс-факторов, вызывающих вторичные иммунодефициты, которые способствуют появлению заболеваний различной этиологии. (B.C. Бузлама, 2000; Ю.Н. Федоров, 2006; Ю.Н. Масьянов, 2009).
Исследованиями В.A. Mallard (1998) показано, что механизмы защиты организма коров и нетелей наиболее уязвимы в период, охватывающий последние 3 недели стельности и первые 3 недели после родов. При этом снижается неспецифическая резистентность и реактивность иммунной системы, что обуславливает возникновение послеродовых заболеваний. Стресс, обусловленный стельностью, отелом и лактацией, может способствовать снижению неспецифической резистентности и повышению заболеваемости в послеродовой период.
По данным зарубежных авторов, задержание последа отмечается у 3-39% отелившихся животных (W.M. Ahmed, 1999; М. Drillich, 2006; J.L. Stephen, 2008). По данным отечественных авторов, заболеваемость маточного поголовья акушерско-гинекологической патологией составляет от 15 до 60% (И.С. Коба, А.Н. Турченко, 2001; В.П. Иноземцев, И.И. Балковой, А.Г. Нежданов; 2000).
Задержание последа приводит к дальнейшим заболеваниям половой системы, в том числе, к различным формам метрита (М.Т. Correa, 1993), длительной ановуляции после отела (F.A. Fonseca, J.H. Britt, 1983; P.A. Oltenacu, J.H. Britt, 1983), многократным повторным осеменениям, удлинению межотельного периода, снижению воспроизводительной-способности. Развивающиеся при этом патологические процессы характеризуются снижением локального и общего иммунитета, активацией свободнорадикальных механизмов и перекисного окисления

Разделение проводили в режиме градиентного элюирования согласно схеме, представленной в Таблице 1.
Таблица
Схема проведения анализа
Время анализа, мин Буферный раствор 1700-0112,% Буферный раствор N3740, % Регенерант 40011,%
0 100 0
12 100 0
34 0 100
53 0 100
53.1 0 0
55 0 0
55.1 100 0
67 100 0
Для определения общего количества аминокислот подготовку проб препарата проводили следующим образом.
В вакуумную пробирку (с патрубком для создания вакуума и навинчивающейся крышкой с резиновыми прокладками) взвешивали с точностью до 0,0001 г 1 г испытуемого образца. Аккуратно добавляли 9 см3 раствора для гидролиза и смешивали с образцом. Пробирки вакуумировали до 100 мбар, герметично закрывали тефлоновыми крышками и помещали на нагревательный модуль для гидролиза на 24 часа при температуре 110 ±5°С. Полученный гидролизат охлаждали до комнатной температуры и фильтровали через бумажный фильтр. Переносили 2 см3 полученного фильтрата гидролизата в круглодонную колбу н упаривали досуха на ротационном испарителе при температуре до 60°С. Сухой остаток растворяли в 5 см3 цитратного буферного раствора, помещали на ультразвуковую баню на 1 мин и затем фильтровали через шприцевой полипропиленовый фильтр (0,2 им) в виалу для автосамплера.
Подготовка проб для определения свободных аминокислот включала следующие этапы.
В колбу на 100 см3 с навинчивающейся крышкой помещали 5 см
испытуемого образца и 5 см3 0,2 N соляной кислоты. Через 5 минут