Научное и практическое обоснование стимулирования иммунометаболических процессов при некробактериозе коров

• Автор: Тарасов, Вячеслав Юрьевич
• Шифр специальности: 06.02.02
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2011
• Место защиты: Белгород
• Количество страниц: 138 с. : ил.

Содержание
Введение

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Этиология некробактериоза и факторы, предрасполагающие к заболеванию

1.2. Характеристика возбудителя некробактериоза

1.3. Эпизоотологические данные

1.4. Иммунитет и специфическая профилактика

1.5. Неспецифическая профилактика некробактериоза

1.6. Заключение

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материал и методы исследований
3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
3.1. Анализ заболеваемости крупного рогатого скота нскробактериозом в хозяйствах Курской области
3.2. Анализ заболеваемости крупного рогатого скота некробактериозом в СХПК «им. Черняховского» и в ЗАО «Курсксемнаука»
3.3. Взаимосвязь между нарушением обмена веществ и высокой реактогенностью вакцины против некробактериоза
3.4. Влияние янтарного биостимулятора и вакцины против некробактериоза на показатели местных поствакцинальных реакций и рецидив заболевания некробактериозом
3.5. Разработка комплексного антисептического препарата и эффективность его применения в клинике лечения злокачественного течения некробактериоза
3.6. Теоретическое и экспериментальное обоснование разработки комплексного иммунометаболического препарата
3.7. Эффективность применения янтарного биостимулятора и металлосукцината при вакцинации коров против некробактериоза

3.8. Эффективность применения металлосукцината для коррекции
иммунометаболических процессов и профилактики некробактериоза у
глубокостельных коров
3.9. Эффективность применения металлосукцината для управления
эпизоотическим процессом некробактериоза у коров
4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ
5. ВЫВОДЫ
6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЯ
Введение
Актуальность темы. Эпизоотологические данные последних лет свидетельствуют о том, что инфекционные заболевания дистального отдела конечностей у коров приобрели экономически значимую проблему для крупных специализированных хозяйств.
Многочисленные исследования свидетельствуют о том, что в их этиологии принимают участие ассоциации различных видов анаэробных и аэробных микробов при доминирующей роли Fusobacterium necroforum (Н.С. Островский, 1964; А.Г. Санин, 1974; A.A. Самоловов, 1981; 1998; 2001; 2003;
С.В. Лопатин, 2001; Ю.Г. Попов, 2005; С.Д. Панасюк, 2007;В.И. Терехов, 2007; К.В. Мельникова, 2010; P. Simon, P. Stovell, 1969 и др.).
По данным ряда исследователей развитие патологического процесса может происходить при обязательном участии F. necroforum (A.A. Волкова, P.C. Галлиев, 1962; А.Х. Лайшев, 1973; A.A. Самоловов, 1997; A.A. Сидорчук, 2001; М.С. Чукеев с соавт., 1989; К.В. Мельникова, 2010 и др.).
По мнению A.A. Самоловова с соавт. (1997), заболевание некробактериозом рассматривается как факторная болезнь, возникающая при нарушении биологического равновесия между макроорганизмом и постоянно переживающими в нем микроорганизмами. В этой связи применение средств специфической профилактики не может иметь определяющего значения. Тем не менее, авторы многих противонекробактериозных вакцин не без успеха добивались достаточно высоких профилактических эффектов (Ю.Д. Караваев с соавт., 1995; 1998; 1999; 2003; С.Д. Панасюк, 2003; 2007; A.A. Сидорчук, 1995; 2001; 2006; О.И. Соломаха, 1999; М. Garcia, К. Кау, 1978; М. Katinka, 1981 и др.).
Однако, как свидетельствуют данные по применению противонекробактериозных вакцин, профилактическая эффективность их весьма вариабильна. Кроме того, применение противонекробактериозных вакцин способно подавлять сопротивляемость организма к

Для проведения РА нами был приготовлен антиген из культуры Fusobacterium necrophorum. Антиген готовили, используя методические подходы, изложенные в диссертации С.В. Лопатина (2006).
Культуру выращивали 48 часов на среде Китта —Тароцци, затем для получения большого количества бактериальной массы Fusobacterium necrophorum ее пересевали на специальную среду аминокровин -сывороточный бульон. Бактериальные клетки освобождали от среды путем центрифугирования при 3000 об/мии в течение 20 минут, промывали физиологическим раствором. Для предотвращения самоагглютинации АГ осадок клеток Fusobacterium necrophorum ресуспендировали в фосфатном буфере pH 7,6 до концентрации 10 млрд. микробных клеток в 1 мл по оптическому стандарту. Исследуемые пробы сыворотки крови животных также разводили в фосфатном буфере.
Антиген инактивировали 0,4 %-ым раствором формалина. Стерильность антигена определяли путем посева на среды Китта — Тароцци, МПА, МПБ.
Основные этапы постановки реакции агглютинации следующие:
1. Готовили основное разведение каждой испытуемой сыворотки крови;
2. Готовили рабочие разведения каждой пробы сыворотки;
3. Во все пробирки с разведенными сыворотками вносили антиген.
Для контроля антигена с целью исключения самоагглютинации в 1 мл
фосфатного буфера добавляли 0,1 мл антигена. Штатив с пробирками помещали в термостат при температуре 37° С на 15-18 часов, а затем выдерживали при комнатной температуре 2-3 часа, после чего учитывали реакцию агглютинации визуально и оценивали ее в крестах.
Показатели агглютинации в пробирках на четыре, три или два креста характеризовались как положительная реакция. Последнее разведение сыворотки, в котором наблюдается агглютинация с оценками на два, три или четыре креста, считали ее титром.