Роль глутаматных рецепторов в формировании памяти у медоносной пчелы и дрозофилы в норме и в условиях дисбаланса кинуренинов

• Автор: Зачепило, Татьяна Геннадьевна
• Шифр специальности: 03.03.01
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2011
• Место защиты: Санкт-Петербург
• Количество страниц: 156 с. : ил.

СОДЕРЖАНИЕ
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА Е ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. ГЛУТАМАТНЫЕ РЕЦЕПТОРЫ, ИХ РОЛЬ В ПРОЦЕССАХ ОБУЧЕНИЯ И ПАМЯТИ
1.1.1. ИМОА-рецепторы
1.1.1.1. Фармакокинетика №УГОА-рецепторов
1.1.1.2. Субъединичный состав ИМОА-рецептора
1.1.1.2.1. N121 -субъединица глутаматного 1ЧМГ)А-рецептора
1.1.1.2.2. М12-субъединица глутаматного ИМОА-рецептора
1.1.1.2.3. ИЛЗ-субъединица глутаматного ЫМОА-рецептора
1.1.2. Метаботропные рецепторы глутамата
1.1.3. Глутаматные рецепторы, обучение и память
1.1.3.1. Молекулярные и физиологические основы обучения и памяти
1.1.3.2. Участие глутаматных рецепторов в обучении и памяти
1.1.3.3. Участие актинового цитоскелета в процессах обучения и памяти
1.1.3.4. иМ-киназа
1.1.3.5. РБГ)-
1.1.3.4. Обучение и пямять у насекомых
1.1.3.4.1. Морфологические структуры насекомых, участвующие в формировании памяти
1.1.3.4.2. Условный пищевой обонятельный рефлекс вытягивания хоботка -модель для изучения памяти медоносной пчелы
1.1.3.4.3. Роль глутаматных рецепторов в процессах обучении и памяти у
насекомых
1.2. КИНУРЕНИНЫ - МОДУЛЯТОРЫ ГЛУТАМАТНЫХ РЕЦЕПТОРОВ..
1.2.1. Кинурениновый путь обмена триптофана
1.2.2. Значение кинуренинов в организме животных
1.2.3. Кинуренины насекомых
1.2.4. Кинуренины - эндогенные лиганды рецепторов глутамата
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
2.1. МАТЕРИАЛ
2.1.1. Пчелы
2.1.2. Дрозофила
2.2. МЕТОДЫ
2.2.1. Поведенческий критерий
2.2.3. Вестерн-блоттинг
2.2.4. Иммуногистохимический метод
2.2.5. Флуоресцентное окрашивание на F-актин
2.2.6. Метод антисенс-нокдауна
ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ
3.1. РЕЦЕПТОРЫ ГЛУТАМАТА У НАСЕКОМЫХ: ИДЕНТИФИКАЦИЯ И ЛОКАЛИЗАЦИЯ В ГОЛОВНОМ ГАНГЛИИ (МОЗГЕ) МЕДОНОСНОЙ ПЧЕЛЫ И ДРОЗОФИЛЫ
3.1.1. Идентификация и локализация NMDA-рецепторов в мозге медоносной пчелы
3.1.2. Идентификация и локализация NR.1 и NR2 субъединиц NMDA-рецепторов в головном мозге дрозофилы
3.1.3. Идентификация и локализация ImGluRl в мозге медоносной пчелы
3.2. РЕЦЕПТОРЫ ГЛУТАМАТА У НАСЕКОМЫХ: ФУНКЦИОНАЛЬНОЕ ЗНАЧЕНИЕ ЦЕНТРАЛЬНЫХ РЕЦЕПТОРОВ ГЛУТАМАТА У МЕДОНОСНОЙ ПЧЕЛЫ
3.2.1. Изучение роли NR1 субъединицы NMDA-рецептора в ассоциативном обучении медоносной пчелы
3.2.2. Изучение роли метаботропных рецепторов глутамата в ассоциативном обучении медоносной пчелы
3.2.3. Изучение возрастной динамики чувствительности к агонистам метаботропных рецепторов L-глутамата у медоносной пчелы

3.3. РЕЦЕПТОРЫ ГЛУТАМАТА, LIMK1, F-АКТИН И PSD-95 В УСЛОВИЯХ ДИСБАЛАНСА КИНУРЕНИНОВЫХ МЕТАБОЛИТОВ
ТРИПТОФАНА
3.3 Л. Изучение чувствительности NMDA-рецепторов в условиях наследственного дефицита кинуренинов
3.3.2. Изучение распределения NMDA-рецепторов в условиях наследственно-обусловленного дисбаланса кинуренинов
3.3.3. Изучение чувствительности mGluR в условиях генетически детерминированного дефицита кинуренинов (мутация snow laranja)
3.3.4. Изучение распределения LIMK-1, F-актина и PSD-95 в мозге дрозофилы и пчелы в условиях дисбаланса кинуренинов
3.3.4.1. Изучение распределения L1MK-1, F-актина и PSD-95 цитоскелета в мозге дрозофилы в условиях дисбаланса кинуренинов
3.3.4.2. Изучение распределения LIMK-1 и фибриллярного актина в условиях вызванного аллопуринолом дефицита кинуренинов в головном мозге
медоносной пчелы
ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
4.1. РОЛЬ ГЛУТАМАТНЫХ РЕЦЕПТОРОВ В ФОРМИРОВАНИИ ПАМЯТИ У ПЧЕЛЫ И ДРОЗОФИЛЫ В НОРМЕ
4.1.1. NMDA-рецепторы
4.1.1.1. Идентификация и распределение NMDA-рецепторов в головном мозге насекомых
4.1.1.2. Участие NMDA-рецепторов в формировании кратковременной памяти у медоносной пчелы
4.1.2. Метаботропные глутаматные рецепторы медоносной пчелы
4.1.2.1. Идентификация метаботропных глутаматных рецепторов (ImGluRl) в мозге медоносной пчелы
4.1.2.2. Возрастная динамика чувствительности к агонистам метаботропных рецепторов L-глутамата у медоносной пчелы

диссоциации нити от Агр2/3 комплекса (Cooper et al., 2004). Они также работают вместе, чтобы реорганизовать микротрубочки в целях переноса большего количества белков внутри везикул для продолжения роста нитей (Svitkina, Borisy, 1999). Активность кофилина ингибируется фосфорилированием его аминокислотного остатка по серину в третьем положении, которое осуществляется ферментом LIM-киназой (Arber, 1998). Повышенный уровень синтеза кофилина стимулирует образование отростков в нейронах (Meberg et al., 2000).
Рис.З. Актин и актин-связывающие белки в филоподии (слева) и дендритном шипике (справа) (Hotulainen and Hoogenraad, 2010).
На рисунке 3 показана организация актина с и некоторых актин-связывающих белков в филоподии и дендритном шипике.
Характер распределения F-актина в нервной системе у разных видов насекомых, в том числе и у медоносной пчелы изучены Фрамбахом с соавторами (2004). Ими показано, что f-актин у насекомых преимущественно
dendritic filopodium
I Polymerizing end t" Arp2/3 complex
Formin (mDia2) ° Capping protein
''Ч Ccfilirt Myosin II
dendritic spine
Profilm t ATP actin
О Capping protein (Eps8) • Profilin + ADP-actin
• ADPactin