БИОПРЕПАРАТ ДЛЯ СТИМУЛЯЦИИ РОСТА И ЗАЩИТЫ РАСТЕНИЙ ОТ БОЛЕЗНЕЙ НА ОСНОВЕ BACILLUS AMYLOLIQUEFACIENS ВКПМ В-11008

• Автор: Сираева, Зульфия Юнысовна
• Шифр специальности: 03.02.03
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2012
• Место защиты: Казань
• Количество страниц: 181 с. : 16 ил.

СОДЕРЖАНИЕ

Список сокращений

Введение

Обзор литературы

1.1 Фитосанитарное состояние посевного материала в мировом сельском хозяйстве

1.1.1 Фитосанитарное состояние семян зерновых культур за рубежом

1.1.2 Фитосанитарное состояние посевного материала в Российской Федерации

1.1.3 Поражение посевного материала токсинообразующими грибами

1.2 Биологический метод защиты растений

1.2.1 Перспективные биопрепараты на основе бактерий из рода Bacillus в мировой сельскохозяйственной практике

1.2.2 Факторы, определяющие антагонистическую активность Bacillus

1.2.3 Совместное применение биопрепаратов на основе Bacillus с пестицидами в рамках концепции интегрированной защиты растений
1.3 Проблема оптимизации фосфатного и азотного режимов почв
1.4 Использование фосфатмобилизующих микроорганизмов для усиления фосфорного питания растений и повышения урожайности сельскохозяйственных культур
1.5 Специфические аспекты применения биопрепаратов
Экспериментальная часть
Материалы и методы
2.1 Объекты исследования
2.1.1 Микроорганизмы

2.1.1.1 Бактериальные штаммы
2.1.1.2 Фитопатогенные микромицеты
2.1.2 Семенной материал
2.1.3 Лабораторные животные, условия содержания
2.1.4 Специальные компоненты биопрепарата
2.1.5 Пестициды
2.1.6 Почвенные образцы
2.1.7 Производственные испытания биопрепарата
2.1.7.1 Место проведения
2.1.7.2 Агроклиматические условия вегетационного периода
2.1.7.3 Характеристика почвы производственных площадей
2.2 Определение уровня антагонистической активности бактерий
2.3 Определение ферментативной активности бактерий
2.3.1 Оценка интенсивности роста
2.3.2 Хитиназная активность
2.3.3 Фосфомоноэстеразная активность
2.3.4 Нитрогеназная активность
2.4 Определение фитотоксической активности штаммов Bacillus
2.4.1 Метод замачивания семян растений
2.4.2 Метод Берестецкого
2.5 Определение цитогенотоксической активности штаммов Bacillus
2.6 Изучение токсичности штаммов Bacillus для теплокровных животных
2.6.1 Определение параметров токсичности штаммов Bacillus. Критерии формирования экспериментальных групп лабораторных животных
2.6.2 Определение острой и хронической токсичности при внутрижелудочном введении
2.6.3 Определение острой дермальной токсичности
2.6.4 Определение дисбиотического действия

2.6.5 Определение диссеминационного эффекта
2.6.6 Общие показатели, используемые при оценке токсического действия штаммов Bacillus на лабораторных животных
2.7 Определение таксономической принадлежности шгамма-продуцента биопрепарата
2.7.1 Характеристика штамма-продуцента биопрепарата на
основе фенотипических признаков
2.7.2 ПЦР-идентификация штамма-продуцента биопрепарата
2.7.2.1 ПЦР-амплификация фрагментов генов 16S рРНК и gyrA.
2.1.2.2 Анализ и выделение фрагментов генов 16S рРНК и gyrA.
2.7.2.3 Секвенирование
2.8 Разработка препаративной формы
2.8.1 Условия хранения и культивирования штамма бактерий
2.8.2 Подбор оптимальной для культивирования штамма-продуцента питательной среды
2.8.3 Подбор специальных компонентов биопрепарата
2.9 Влияние биопрепарата на ферментативную активность почвы
2.9.1 Обработка почвенных образцов
2.9.2 Определение ферментативной активности почвы
2.9.2.1 Определение уреазной активности почвы
2.9.2.2 Определение протеолитической активности почвы
2.9.2.3 Определение целлюлазной активности почвы
2.9.3 Определение активности азотфиксации почвы
2.10 Оценка дефосфорилирующей активности штамма-продуцента
2.10.1 Определение фосфатмобилизующей активности штамма-продуцента в жидких питательных средах
2.10.2 Определение дефосфорилирующей способности штамма-продуцента в модельном эксперименте
2.11 Изучение эффективности применения биопрепарата в качестве протравителя семян зерновых культур

инсектицидами. Так, в многолетних испытаниях на различных культурах (зерновые, лен, сахарная свекла, соя) подтверждена эффективность сочетаний альбита с гербицидами (прима, пума супер, грасп, диален супер и др.); повышение урожайности составляет в среднем 16%, а затраты на совместное внесение препаратов окупаются в 5 раз (Злотников и др., 2008). В условиях лесостепи Зауралья при обработке посевов яровой пшеницы показана эффективность баковых смесей препарата интеграл с гербицидами (Ларионова, 2008). В Новосибирской области отмечено антистрессовое действие бактофита при обработке посевов яровой пшеницы совместно с гербицидами и повышение урожайности в варианте с гепардом - до 20%, элантом - до 13%, смесью октапона и террамета - до 13%, дифезаном - до 7% (Франк и Кищенко, 2008). В Сибири совместное применение бактофита с гербицидами на основе 2,4-Д и хлорсульфурона повышало продуктивную кустистость, озерненность колоса, урожайность (на 8.2-41.6%) (Коробов и Коробова, 2007).
Таким образом, применение баковых смесей на основе биопрепаратов и химических пестицидов в половинных дозах позволяет наиболее полно реализовать синергический эффект, снизить пестицидный стресс в агроценозах и увеличить урожайность.
1.3 Проблема оптимизации фосфатного и азотного режимов почв
Оптимизация фосфатного и азотного режимов почв является важной составной частью глобальной проблемы повышения продуктивности сельскохозяйственных культур (Державин, 2010; Чекмарев и др., 2010; 2011; Алметов и др., 2011; Тгоэзагс! й а1., 2009; Ргаэзаппа й а1., 2011; МоЬаттасІі, 2012). В отличие от углерода и азота потребности растений в фосфоре должны быть практически полностью обеспечены почвой. Валовые запасы этого элемента в различных типах почв составляют от 2.9 до 30 т на га пахотного слоя (в среднем 0.1-0.25%). За последние 15 лет обеспеченность пахотных почв РФ подвижным фосфором снизилась на 5-15 мг/кг (Чекмарев