Молекулярно-цитогенетическое изучение половых хромосом у видов Humulus Lupulus и Humulus Japonicus

• Автор: Александров, Олег Сергеевич
• Шифр специальности: 03.02.07, 03.01.06
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2010
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 145 с. : ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ

СПИСОК ИЛЛЮСТРАЦИЙ

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Системы половых хромосом у растений

1.1.1. Гомоморфные системы половых хромосом

1.1.2. Гетероморфные системы половых хромосом

1.1.2.1. Гетероморфные системы с активной У хромосомой

1.1.2.2'. Гетероморфные системы с Х/А-балансовой детерминацией пола

1.2. Растения рода Нити1ш и их системы половых хромосом

1.2.1. Классификация и ботаническое описание растений рода Нытик/я.
1.2.2. Изучение половых хромосом растений рода Нити/ия
1.3. Повторяющиеся последовательности генома и их использование для изучения половых хромосом
1.3.1. Краткое описание локализации и роли повторяющихся последовательностей в геноме
1.3.2. Использование повторяющихся последовательностей для изучения хромосом
1.4. Полоспецифичная ДНК двудомных растений и молекулярное маркирование пола
1.4.1. ЛАРО-маркеры в идентификации пола
1.4.2. ^БЯ-маркеры в идентификации пола
ГЛАВА II. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
2.1. Растительный материал
2.2. Выделение ДНК из растительного материала
2.3. Рестрикицонный анализ
2.4. ПЦР-анализ
2.5. АЕ-ПЦР
2.6. Клонирование фрагментов ДНК
2.7. Анализ нуклеотидных последовательностей
2.8. Флюоресцентная in situ гибридизация (FISH)
2.9. Безденатурационная FISH для выявления теломер
ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЯ
3.1. Изучение полоспецифичной ДНК хмеля обыкновенного и хмеля японского
3.1.1. Поиск новых полоспецифичных участков генома у хмеля японского
3.1.2. Поиск новых полоспецифичных участков генома у хмеля обыкновенного
3.2. Изучение сателлитной ДНК растений рода Humulus
3.2.1 Выделение высококопийных последовательностей у растений рода Humulus
3.2.2. Подбор праймеров на выделенные высокопийные поледовательности. Изучение инвертированных повторов
3.2.3. Изучение локализации найденных высококопийных последовательностей с помощью FISH
3.2.3.1. FISH на митотических хромосомах хмеля обыкновенного
3.2.3.2. FISH на мейотических хромосомах хмеля обыкновенного
3.2.3.3. Формирование половых хромосом хмеля обыкновенного в свете результатов локализации повтора GU831
3.2.3.4. Обобщённая структурно-функциональная модель половых хромосом хмеля обыкновенного
3.2.3.5. FISH на митотических хромосомах хмеля японского
3.2.3.6. Формирование половых хромосом хмеля японского в свете результатов локализации повтора GU831
3.2.3.7. Обобщённая структурно-функциональная модель половых хромосом хмеля японского
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

половыми хромосомами у Н. japonicus были отмечены ещё в модели
Рис. 6 Схема расположения регионов спаривания половых хромосом хмеля японского в профазе мейоза (по Darlington, 1932).
Существует также предположение, что в некоторых случаях половые хромосомы хмеля японского конъюгируют в мейозе с парой аутосом (рис. 7), подобно тому, как это описано в случае с хромосомами Н. lupulus var. cordifolius (Kihara, 1929; Darlington, 1932).
Рис. 7 Образование пентавалента между половыми хромосомами и парой аутосом хмеля японского в профазе мейоза (по Кіііаіа, 1929).
В ходе изучения мейоза аномального мужского экземпляра, Кійага (1929) наблюдал 6 нормальных бивалентов и пентаваленгный комплекс половых хромосом с одной из малых пар аутосом, сформированный в порядке УгБ-э-Х-Уг. Не принимая во внимание детерминацию пола у хмеля японского на основе баланса Х/А и тот факт, что фертильность пыльцы при нормальных условиях среды составляет практически 100%, Кійага предположил, основываясь на результатах своих наблюдений, что в результате расхождения хромосом пентавалента образуются гаметы в самых
Darlington (1932) (рис. 6).