Исследование оптимальных условий культивирования бактерий рода Pseudomonas-продуцентов биологически активных веществ

• Автор: Асабина, Елена Антоновна
• Шифр специальности: 03.00.23
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2009
• Место защиты: Уфа
• Количество страниц: 101 с. : ил.

Оглавление

Введение
1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Бактерии рода Pseudomonas
1.1.1. Антагонистическая активность PGPR Pseudomonas
1.1.2. Синтез фитогормонов PGPR Pseudomonas
1.1.3. Биопрепараты на основе бактерий рода Pseudomonas
1.2. Оптимизация культивирования бактерий рода Pseudomonas
1.2.1.Условия культивирования, питательные среды для бактерий рода Pseudomonas - продуцентов метаболитов с антигрибной активностью
1.2.2. Математическое моделирование в оптимизации условий кул ьтивирования микроорганизмов
2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
2.1. Объекты исследований
2.2. Условия хранения бактерий p. Pseudomonas
2.3. Условия хранения и культивирования фитопатогенных грибов
2.4. Условия культивирования бактерий p. Pseudomonas
2.5. Оптимизация условий культивирования бактерий p. PseudomonasAA
2.6. Определение антигрибной активности метаболитов Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью
2.7. Определение спектра антагонистического действия культур Pseudomonas
2.8. Определение фитогормональной активности метаболитов Pseudomonas
2.9. Приготовление автолизата пивных дрожжей
2.10. Приготовление автолизата пекарских дрожжей
2.11. Определение содержание белка в дрожжевом автолизате
2.12. Определение массовой доли азота аминогрупп аминокислот и

низших пептидов в дрожжевом автолизате
2.13. Определение массовой доли общего азота в дрожжевом автолизате
2.14. Статистическая обработка результатов
3. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
3.1. Оптимизация питательных сред при культивировании бактерий рода Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью
3.1.1. Дрожжевой автолизат — компонент питательной среды
3.1.2. Получение математических моделей для трёх штаммов Pseudomonas
3.1.3. Определение оптимального состава питательных сред для культивирования бактерий Pseudomonas
3.2. Штамм Pseudomonas chlororaphis ИБ
продуцент цитокининов
3.3. Культивирование бактерий рода Pseudomonas, обладающих фунгицидной активностью
3.3.1. Оптимизация условий культивирования грех штаммов Pseudomonas
3.3.2. Оценка антигрибной активности штаммов Pseudomonas, выращенных в оптимальных условиях
3.3.3. Изучение параметров культивирования штамма Pseudomonas chlororaphis ИБ 51 в периодических и
непрерывных условиях
3.4. Питательные среды для промышленного культивирования псевдомонад и экономический эффект от использования новых сред
Заключение
Выводы
Список литературы
Приложение

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
АСВ - абсолютно сухие вещества
ВКМ - всероссийская коллекция микроорганизмов
ВЭЖХ - высокоэффективная жидкостная хроматография
ИУК - индолил-3-уксусная кислота
ИФА - иммуноферментный анализ
КЖ - культуральная жидкость
КОЕ - колониеобразующие единицы
НМ - низкомолекулярные
ПФЭ — полный факторный эксперимент

агробиологических работах. Так, например, Хэдер и др. (Hader et ail., 1957) использовали план второго порядка для исследования совместного влияния меди, железа и молибдена на рост салата.
Методы математического планирования эксперимента (метод
случайного баланса, факторный эксперимент, метод Бокса-Уилсона) были использованы при подборе состава оптимальных сред и условий культивирования (Богоров и др., 1965, Максимов, Фёдоров 1966).
В последнее время в публикациях посвящённых математическому моделированию в микробиологии и биотехнологии, фигурируют различные микроорганизмы.
Бойченко Д.М. с соавт. (2002) проводил оптимизацию среды и условий культивирования Pénicillium roguefortii f39 методом математического планирования, что позволило увеличить выход продукта алкалоида в 1,5-2 раза.
Багдасарян З.Н. с соавт. (2000) проводил оптимизацию среды и условий культивирования продуцента фумаразы и аспартазы Erwinia sp., что привело к увеличению выхода продуктов в 3.0-3,8 раза.
Кондратьевой Т.Ф. с соавт. (1990) была оптимизирована питательная среда с целью увеличения количества синтезируемого Pullularia pullulans пуллулана более чем в 2,8 раза.
Волчатовой И.В. с соавт. (1997) в результате оптимизации состава питательной среды и исходной величины pH была отрегулирована способность базидиомицета Coriolus villosus синтезировать лигниназу.
Королёвой О.В. с соавт. (2000) подобраны оптимальные параметры в условиях глубинного культивирования базидиомицета Coriolus hirsutus — продуцента внеклеточной лакказы.
Автономова А. В. с соавт. (2006) разработала состав питательной среды для погруженного культивирования Canodenna lucidum - гриба продуцента противоопухолевых, иммуностимулирующих, антимикробных и др.