Исследование продукционных характеристик фитопланктона с помощью погружного флуоресцентного зонда

• Автор: Антал, Тарас Корнелиевич
• Шифр специальности: 03.00.18, 03.00.02
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2000
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 135 с. : ил.

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА I ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Структурнофункциональная организация фотосинтетимсского аппарата растений и водорослей

1.2. Природа быстрой флуоресценции хлорофилла а в

фотосинтстичсских мембранах

1 3 Методы измерения быстрой флуоресценции хлорофилла и их использование для изучения состояния природною фитопланктона

1 4. Генерация замедленной флуоресценции в

реакционных центрах фотосинтеза

ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2 1. Объекты исследования

2.2. Методы исследования
2.2 1. Аппаратура и методы измерения быстрой флуоресценции хлорофилла природного фитопланктона
2.2.2. Регистрация замедленной флуоресценции ФС I при
высокой температуре
2.2.3. Традиционные методы регистрации характеристик фитопланктона
ГЛАВА 3. ИССЛЕДОВАНИЕ СВЯЗИ ПАРАМЕТРОВ ФЛУОРЕСЦЕНЦИИ Бо И РуЕш СО СКОРОСТЬЮ ФОТОСИНТЕЗА ФИТОПЛАНКТОНА
3.1. Исследование вариабельности парамегров ки
в Балтийском море
3.2 Оценка фотосинтетинсской продукции фитопланктона флуоресцентным методом
ГЛАВА 4. ВЛИЯНИЕ ВНЕШНИХ ФАКТОРОВ НА ПАРАМЕТРЫ ФЛУОРЕСЦЕНЦИИ ХЛОРОФИЛЛА ПРИРОД1ЮГО ФИТОПЛАНКТОНА
4.1 Влияние основных факторов среды минеральное питание и свет на параметры флуоресценции фитопланктона
4 2 Параметры флуоресценции фитопланктона при комплексном
действии внешних факторов
4.3. Влияние токсического загрязнения на параметры флуоресценции фитопланктона
ГЛАВА 5. ИЗУЧЕНИЕ ОКИСЛИТЕЛЬНЫХ ПРОЦЕССОВ В ФС 1 ПРИ ВЫСОКОЙ ТЕМПЕРАТУРЕ ФЛУОРЕСЦЕНТНЫМ МЕТОДОМ НА ПРИМЕРЕ ТЕРМОФИЛЬНЫХ ЦИАНОБАКТЕРИЙ
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ
ЛИТЕРАТУРА


Перенос электрона между Фсо и представляет собой электрогенную реакцию в ФС II v . i, , i, . V, , . Полностью восстановленная с участием негемового железа i . Окисленный первичный донор электронов РЦ ФС II Радо получает электрон из системы разложения воды i . . , который, как показано , , . Тут1 в Iбелке фотосистемы II. Накопление четырех зарядов, необходимых для окисления двух молекул Н и высвобождения четырех протонов и электронов описывается в рамках состояний кислородвыделяюшей системы i , vi . . Принципиальную роль в стабилизации кислородвыделяющсго комплекса и в процессе накопления зарядов во время перехолов играют ионы iv . . Комплекс фотосистемы I осуществляет фотоиндуцнрованное восстановление фсррсдоксина за счет окисления пласто танина, восстановленного второй фотосистемой , . Фотосистема I, так же как и ФС II, содержит периферическую Хл аА. Ь светособнрающую антенну ССК I . I . В состав I входит 4 полипептида массой от до кДа и половина всего хлорофилла примерно 0 молекул Хл . Хл Ь хлорофнллбелкового комплекса ФС I i, . Полипептиды, принадлежащие ССК I, кодируются ядерным геномом , , . ССК II . В отличие от пигментного состава ССК II свстособирающая антенна ФС I содержит больше Хл а, и величина отношения Хл аЬ в ССК I равна 3,54,0 i . Собственно комплекс ФС I состоит из семи полипептидов массой от до кДа i, , , , . i, i, . Сердцевину или ядро комплекса составляет гетеродимер, который несет фотохимически активный реакционный центр Ро димер Хл л и два акцептора электронов Ао молекула Хл а и i молекула филлохинона. i а Время первичного разделения зарядов составляет около пс iii . В результате разделен зарядов образуется первичная радикальная пара в синглетном состоянии РзюА В процессе интеркомбинационной конверсии за время около 3 не устанавливается равновесие между триплетным и синглетным состояниями первичной радикальной пары , При рекомбинации радикальной пары из синглетного или триплетного состояний образуется, соответственно, основное или триплетнос состояние первичного донора. Выход тсс при рекомбинации первичной радикальной пары составляет при комнатной температуре от vv . i . Спад триплетного состояния в основное происходит за время 4. i и 2. i. За первичным акцептором порфнриновой природы следует хннонный акцептор Препараты ФС 1 из высших растений, водорослей и цианобактерий содержат две молекулы филлохинона, связанные с гстсродимсром, образующим ядро РЦ , . Из двух молекул только одна А1 обладает фотохимической активностью как у высших растений I, Ii, , так и у цианобактерий ii, i, . От восстановленного акцептора А1 электрон переносится на жслсзосерныс центры, а в случае, когда они восстановлены, наблюдается рекомбинация в паре Р АГ за время 0 не при комнатной температуре. Последующий перенос электрона и ФС I осуществляется железосерными центрами типа 44 x, и i, i, i, Центры и очень близко расположены, находятся на одном белке и обладают близкими значениями окислительновосстановительного потенциала 03 мВ для и 04 мВ для v . В физнологаческих условиях от терминальных акцегторов РЦ ФС 1 и электрон передастся на внешний акцептор ферредокенн растворенный в стромальной фазе 226. массой 9 кДа . Конечная стадия фотосинтетического образования ИАДФН происходит с участием комплекса, содержащего ферредоксин НЛДФоксилорелуктазу . На донорной стороне РЦ ФС I восстановление Ртоо происходит от подвижного переносчика пластоцианина у некоторых водорослей и цианобактерий от цитохрома с3.