Биогенез пигмент-белковых комплексов хлоропластов ячменя

• Автор: Абрамчик, Лариса Михайловна
• Шифр специальности: 03.00.12
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 1983
• Место защиты: Минск
• Количество страниц: 156 c. : ил

СОДЕРЖАНИЕ
ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА I. СТРУКТУРА ФОТОСИНТЕТИЧЕСКОЙ МЕМБРАНЫ И ЕЕ БИОГЕНЕЗ Обзор литературы

1.1. Организация хлоропластных мембран.

1.2. Пигаентбелковые комплексы хлоропластных мембран и проблемы их сборки.

1.3. Применение антител в исследованиях молекулярной организации фотосинтетической мембраны

ГЛАВА 2. МАТЕРИМ И МЕТОДЫ

2.1. Объекты исследования.

2.1.1. Мембраны пластид .

2.1.2. Субмембранные фракции этиопластов и хлоропластов

2.1.3. Пигментбелковые комплексы хлоропластных мембран.

2.Г4. Протохлорофиллидголохром.
2.1.5. Выделеше проламеллярных тел г ламелл этиопластов .
2.1.6. Полипептиды пластидных мембран.
2.1.7. Выделение хлорофилловых питаентов
2.2. Иммунохимияеские методы, использованные при изучении биогенеза пластидных мембран
2.2.1. Получение антисывороток против мембран пластид и их отдельных компонентов
2.2.2. Встречная двумерная диффузия
2.2.3. Перекрестный иммуноэлектрофюрез.
2.2.4. Ракетный иммуноэлектрофорез
2.3. Введение радиоактивной метки в белки.
ГЛАВА 3. СРАВНИТЕЛЬНЫЙ АНАЛИЗ МЕМБРАН ЭТИОПЛАСТОВ И
ХЛОРОПЛАСТОВ НА РАЗНЫХ УРОВНЯХ ИХ ОРГАНИЗАЦИИ
3.1. Мембраны этиопластов в процессе зеленения
3.2. Роль пигментных компонентов шгаетидных мембран в перекрестных серологических реакциях.
3.3. Субмембранные Фракции этиопластов и хлоропластов, полученные с помощью тритона Х0.
3.4. Сравнение пигментбелковых комплексов мембран хлоропластов, выделенных с помощью ДЦСИа, с мембранами этиопластов
3.5. Протохлорофиллидбелковый комплекс этиопластов как предшественник пигментбелковых комплексов фотосинтетической мембраны
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ЦИТИРУЕМАЯ ЛИТЕРАТУРА.
ВВЕДЕНИЕ


К хлоропластной мембране в значительной степени могут быть отнесены основные принципы организации любой биологической мембраны. Существование общих принципов в структуре мембраны позволило Даниэлю и Даусону в г. Согласно этой унитарной гипотезе, основу мембраны создает билипидный слой, обуженный по краям двумя белковыми слоями. В настоящее время наиболее обоснованными экспериментально выглядят динамичные модели, из разнообразия которых можно выделить субъединичные, жидкомозаичные и жидкомозаичные с твердой основой. Согласно субъединичной модели, мембраны строятся из повторяющихся протомерных единиц, формирующих решетку. Жидкомоза ичная модель предполагает, что белковые молекулы в виде разнообразных глобул полностью или частично погружены в вязкий ли пидный матрикс, так что углеводородные хвосты липидов и непо лярные аминокислотные остатки белков образуют внутреннюю среду, не контактируюущую с водной фазой, а периферические белки при креплены к поверхности мембраны с помощью электростатических сил. Внутренние белки могут в некоторых случаях пронизывать мембрану и образовывать агрегаты, между которыми остаются узкие пространства, заполненные либо гидрофильной, либо гидрофобной средой. Гидрофобная среда метаболически неактивна, водная среда, напротив, создает условия для протекания метаболических процессов i i Д2. Согласно представлениям о твердокаркасножидкомозаичной модели интегральные белки могут соединяться между собой мостиками из молекул периферических белков, образуя твердоупругий каркас. Белковолипидная сетка может распадаться и вновь возникать в зависимости от состояния мембраны. Часть интегральных белков может не включаться в каркас и сохраняет подвижность Конев,Мажуль,. Варианты жидкомозаичных моделей предусматривают возможность существования локусов, различающихся как химически, так и морфологически. Лабильность и подвижность матрикса делает возможным перемещение компонентов мембраны в том или другом направлении и на разную глубину. Например, ферментные системы могут располагаться на разной глубине в зависимости от состояния мембраны. Основные положения жидкомозаичных моделей могут быть распространены и на организацию хлоропластных мембран. Внешними в этом случае являются белки, осуществляющие определенные функ ции, но не участвующие в поддержании целостности структуры например, сопрягающий фактор, НАДФредуктаза, а внутренними белки, стабилизирующие мембрану основные пигментбелковые комплексы хлоропластных мембран. Пул пластохинонов в хлоропласт ных мембранах обеспечивает челночный механизм, участвующий в транспорте протонов с наружной стороны мембраны во внутреннюю , или между мембранами ,. Белкипереносчики в цепи электронного транспорта представляются внедренными в мембрану на разную глубину, причем именно неравномерность их расположения обеспечивает направленный перенос восстановленных эквивалентов и водорода i ,. Особый интерес представляет вопрос о локализации в фотосинтетической мембране молекул хлорофилла. Хлорофилловые пигменты, каротиноиды и пластохиноны, как известно, не включаются в формирование липидного матрикса, а выполняют функциональную на грузку. Спектры поглощения и флуоресценции хлоропластов i viv и i vi свидетельствуют о существовании большого разнообразия форм хлорофилла. Спектральные свойства хлорофилла в на тивной мембране могут определяться не только взаимодействием пигмента с пигментом, но и с гидрофобными участками белков. Становится все более очевидным, что связь с белком в значительной степени определяет относительную ориентацию молекул хлорофилла. В целом проблема пигментпигментных и пигментбелковых взаимодействий в нативной мембране еще далека от окончательного решения, так же как и вопрос о локализации пигмента в нативной мембране. Молекула хлорофилла обладает гидрофильной областью у края, прилегающего к фитольному хвосту. Гидрофильными свойствами обладает и атом магния. Хлорофилл ь несколько более полярен по сравнению с хлорофиллом а. Специальные расчеты показали, что все хлориновые кольца молекул хлорофилла в мембране расположены под некоторым углом к поверхности. Согласно модели Андерсон , . Рис.