Биология размножения и питания северного морского котика

• Автор: Болтнев, Александр Иванович
• Шифр специальности: 03.00.08
• Научная степень: Докторская
• Год защиты: 2000
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 357 с. : ил.

СОДЕРЖАНИЕ
ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. СЕВЕРНЫЙ МОРСКОЙ КОТИК КРАТКИЙ ОБЗОР БИОЛОГИИ.И

1.1. Отряд ластоногих характеристика.

1.2. Семейство ушастых тюленей.

1.3. Обзор биологии северного морского котика

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА.

ГЛАВА 3. ПИТАНИЕ И КОРМОВОЕ ПОВЕДЕНИЕ СЕВЕРНЫХ МОРСКИХ КОТИКОВ У КОМАНДОРСКИХ ОСТРОВОВ
3.1. Исследование питания командорских котиков в период действия международной конвенции

3.2. Кормовые циклы самок котиков во время лактации

3.2.1. Морфометрия отловленных самок и детенышей

3.2.2. Продолжительность пребывания самок на берегу.
3.2.3. Продолжительность кормового путешествия
3.3. Поведение самок при кормодобывании
3.3.1. Время кормежки.
3.3.2. Глубина ныряний
3.3.3. Продолжительность ныряния самок на разные глубины
3.3.4. Скорость погружения и всплытия,
время на дне и отдых между нырками
3.3.5. Зависимость параметров ныряния от возраста
и размеров самок и детенышей
3.3.6. Бюджет времени самок морских котиков в море
3.3.7. Скорость плавания
3.4. Районы питания самок
3.5. Изменение массы тела самок в течение первых
недель лактации
3.6. Обсуждение
ГЛАВА 4. РОСТ И СОЗРЕВАНИЕ СЕВЕРНЫХ МОРСКИХ КОТИКОВ
4.1. Рост и возрастные изменения экстсрьерных и интерьерных признаков северных морских котиков.
4.2. Возрастная изменчивость сперматогенеза у северных
морских котиков.
4.3. Обсуждение.
ГЛАВА 5. РОДИТЕЛЬСКИЕ ЗАТРАТЫ НА ВОСПРОИЗВОДСТВО
И РЕПРОДУКТИВНЫЙ УСПЕХ
5.1.Краткий обзор современных исследований проблем родительского инвестирования в потомков.
5.1.1. Родительский вклад в потомство и репродуктивный успех.
5.1.2. Родительский вклад в потомков разного пола
5.1.3. Регуляция соотношения полов.
5.2. Родительское инвестирование в потомков у ластоногих
5.2.1. Родительская забота о потомстве.
5.2.2. Стоимость воспроизводства.
5.2.3. Связь между расходом энергии и инвестированием
5.2.4. Дифференциальный вклад в самцов и самок.
5.2.5. Тестирование теории соотношения полов у ластоногих
5.3. Материнский вклад у северных морских котиков.
5.3.1. Привал самок на лежбище и продолжительность лактации
5.3.2. Материнский вклад в пренатальный период.
5.3.2.1. Размеры тела и соотношение полов у котиков
при рождении
5.3.2.2. Возрастное изменение материнского инвестирования.
5.3.2.3. Сезонное изменение размеров новорожденных котиков
5.3.2.4. Мсжгодовые изменения размера новорожденных котиков.
5.3.2.5. Влияние происхождения матерей на качество потомства.
5.3.2.6. Старение и материнские затраты.
5.3.2.7. Материнское инвестирование и смертность новорожденных котиков.
5.3.3. Материнский вклад в период лактации.
5.3.4. Обсуждение результатов исследования материнского вклада
у северных морских котиков.
ГЛАВА 6. ВОЗРАСТНАЯ СТРУКТУРА САМОК И РОСТ ЩЕНКОВ.
6.1. Периодичность участия самок в размножении
6.2. Возрастная структура и смешиваемость популяций
на Северном лежбище
6.3. Возрастная структура самок и размер детенышей.
ГЛАВА 7. СОВРЕМЕННОЕ СОСТОЯНИЕ КОМАНДОРСКОЙ ПОПУЛЯЦИИ СЕВЕРНЫХ МОРСКИХ КОТИКОВ
7.1. Основные демографические характеристики
командорской популяции северных морских котиков
7.2. Обсуждение
ГЛАВА 8. ИНДИВИДУАЛЬНЫЕ РЕПРОДУКТИВНЫЕ СТРАТЕГИИ
СЕВЕРНЫХ МОРСКИХ КОТИКОВ
ОСНОВНЫЕ ВЫВОДЫ.
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАНННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ.
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность


Возраст новорожденное детеныша от 0 до 35 дней определялся визуально преимущественно по наличию последа, а в случае его отсутствия по комплексу признаков состоянию пуповины, цвету ластов, наличию ювенильного кала, отсутствию оборонительной реакции в поведении. Детеныша отлавливали сачком на 3х метровом шесте, помещали внутрь ПНП и взвешивали на ти килограммовом пружинном динамометре с точностью до 0. Затем его клали животом вниз на мерную доску и измеряли с точностью до 1. В некоторых случаях измеряли обхват тела за передними ластами. После этого детеныша мегили стандартными металлическими метками и отпускали к матери. В отдельные годы и гг. В последствии часть меченых детенышей была отловлена для изучения темпов роста. Последующие отловы детенышей проводили либо с помощью ПНП, либо во время отгонов для массового мечения приплода в начале августа, специальных отгонов для изучения темпов роста и промысловых отгонов в октябреноябре. В течение репродуктивного периода мы контролировали выживаемость меченых детенышей, при обнаружении павшего меченого детеныша фиксировали серию и номер метки, дату и место обнаружения. В г. Кишечный, по возможности, ежедневно подсчитывали численность погибших детенышей, определяли их пол, проводили патологоанатомическос вскрытие. Всех случайно забитых во время промысла самок и меченых или старых самцов мы взвешивали, измеряли длину тела, промеряли различные части тела и взвешивали внутренние органы. Схема промеров тела котика представлена на рис. Массу тела определяли с помощью пружинного динамометра с точностью до 1. Внутренние органы взвешивали на медицинских весах ВМ печень, легкие с точностью до г на весах ВГЩ2 сердце, селезенка, почки с точностью до 2 г на технических весах железы внутренней секреции, семенники с точностью до 0. Внутренние органы подготавливали к взвешиванию таким образом, чтобы посторонние ткани не оказывали влияния на результат. Рис. Схема промеров тела северного морского котика. Обозначения к рис. Возраст забитых котиков определялся, в большинстве случаев, по металлическим меткам, поставленным на животное при рождении, либо но годовым слоям дентина в клыках верхней челюсти. Гистологический материал от разновозрастных животных был собраны во время промысла, научного забоя, а также от только что погибших во время репродуктивного периода животных. Для гистологических исследований материал фиксировали в жидкостях Буэна, Штиве, Кариуа, нейтральном растворе формалина. Для электронной микроскопии материал фиксировали в 2 растворе глутарового альдегида с последующей фиксацией материала в 1 растворе четырехокиси осьмия. Дальнейшую обработку материала проводили по общепринятой методике. Парафиновые срезы окрашивали с помощью обычных методов, а также применяли ШИКреакцию, трихромШИК. ДНК выявляли реакцией Фельгена, РНКпиронином по БРАШЕ, суммарные нуклеопротеиды хромовоквасцовым галлоцианином по Эйнарсону. Для выявления липидов использовали замороженные срезы и окраску Суданом черным, Суданом Ш1У. Для электронной микроскопии материал заливали в смесь эпоксидных смол, контрастировали уранилацетатом и цитратом свинца. Мы использовали обычный световой микроскоп и электронный микроскоп ТЕСЛА БС0. На серии электронных микрофотографий при увеличении х проводили измерения секреторных гранул по 00 гранул для каждого тина клеток. Диаметр семенных канальцев измеряли на поперечных срезах с помощью винтового окулярного микрометра при увеличении в 0 раз по измерений для каждого животного. Подсчитанное число этих клеток с учетом их диаметра корректировали по известным формулам Аберкромби в модификации Ортавана. Подготовка гистологических препаратов и их анализ осуществлялся на базе Воронежского агроуниверситета кафедра анатомии, гистологии и патанатомии, заведующий кафедрой профессор, д. П. М. Торгуй. При отлове самок, установке датчиков и анализе данных мы придерживались методик, подробно описанных в работе Р. Джентри и Дж. Куймана , с некоторыми модификациями. Самку отлавливали на залежке в большинстве случаев сразу после родов. Отлов проводили два человека из передвижного наблюдательного пункта ПНП с помощью трехмегрового шеста с веревочной петлей рис. Рис.