Исследование цианобактерий рода Prochlorothrix

• Автор: Величко, Наталия Владиславовна
• Шифр специальности: 03.00.07
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2008
• Место защиты: Санкт-Петербург
• Количество страниц: 154 с. : ил.

1.1. История открытия цианобактерийпрохлорофитов и их распространение.

1.1.1. Представители р. Рноснижои

1.1.2. Представители р. Рюснюиотнюх

1.1.3. Представители р. РкоснюяососсиБ.

1.1.4. Представители р. Асануосшош

1.2. Метаболизм цианобактерийпрохлорофитов.

1.3. Экофизиологические условия обитания цианобактерийпрохлорофитов

.4. Морфология цианобактерийпрохлорофитов

1.5. Внутриклеточное строение цианобактерийпрохлорофитов.

1.5.1. Клеточная оболочка

1.5.2. ИНТРАЦИТОПЛАЗМАТИЧЕСКИЕ МЕМБРАНЫ

1.5.3. Зона нуклеоида.
1.5.4. Включения
1.5.5. Покровные структуры
1.6. Способы подвижности цианобактерий
1.7. Особенности организации фотосинтетического аппарата цианобактерий и прохлорофитов.
1.7.1. Пигментный состав
1.7.2. Состав и структура фотосинтетического аппарата.
1.8. Систематика и филогения представителей филы ВХ Суановасгеша
ЗАКЛЮЧЕНИЕ К ОБЗОРУ ЛИТЕРАТУРЫ
ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ.
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
2.1. Материал и условия культивирования.
2.2. Микроскопия
2.3. Оценка влияния уровня солености среды
2.4. Регистрация фотоиндуцированных изменений внеклеточного
2.5. СПЕКТРОФОТОМЕТРИЯ
2.6. Получение сферопластов и бесклеточных препаратов.
2.7. Анализ фикобилипротеинов.
2.8. Высокоэффективная жидкостная хроматография.
2.9. 0ЛУЧЕНИЕ мембранных препаратов и количественное определение пигментов .
ВВЕДЕНИЕ


Отмечены также случаи, когда в границах одного слоя эуфотической зоны сосуществовали разные экотипы генетически близких прохлорококков . Культуры . С и освещенности 0 лк, в зависимости от экотипа . Однако, условия максимально эффективного культивирования прохлорококков обеспечивают среды 8, , и 6, приготовленные на основе морской воды с добавлением мочевины, глицерофосфата, а также минимального набора витаминов, микроэлементов и хелатирующих агентов . Представители . В г. Миясита с соавторами ii . На данный момент известно три изолята i . I7 и два свободноживущих ССМЕЕ и i , , i . Легитимного описания пока еще не получил ни один из них. Наиболее широко изучается . I эктосимбионт колониальной асцидии ii , обитающей на атолле Палау в западной части Тихого океана. Желтозеленые клетки . Однако, в отличие от ii, i i успешно выращивают в лабораторных условиях при С и освещенности лк на минеральной среде К или , содержащей искусственную морскую воду ii . Сэлтун в Калифорнии, США i . Это умеренно соленое эвтрофное озеро, характеризующееся высоким содержа исм органического азота до 1,2 мгл, фосфора до 0,1 мгл и углерода до ,9 мгл. Среди фитопланктона преобладают диатомовые водоросли и цианобактерии . Штамм i . С и освещенности 0 лк , , i . Второй свободноживущий изолят i . Он был обнаружен на скалистом побережье острова i, внутреннего моря Сетэ, Япония с. МК 1 на слабом свету при С i . На данный момент о нем известно относительно мало. Таким образом, за прошедшее время исследователи проделали большой путь от описания экзотических хл содержащих оксигснных фототрофных бактерий до характеристики биологического разнообразия широко распространенных форм цианобактерий, обладающих разными вспомогательными хлорофиллами, к которым в настоящее время относят нрохлорофитов. Окснгенная фототрофии. Основу эффективности фоторецепторного аппарата оксигенных фототрофных бактерий составляет способность пигментов хлорофиллов, каротиноидов и фикобилипротсинов улавливать практически весь спектр видимого света от 0 до 0 нм i, Пиневич, Аверина, . В процессе оксигенной фототрофии энергия квантов света усваивается фотосинтетичсским аппаратом посредством ряда фотофизических и фотохимических реакций , . Антенная система фотосинтетического аппарата поглощает кванты света и передаст энергию специализированным молекулам хлорофилла реакционных центров РЦ фотосистемы I ФС1 Р0 и фотосистемы И ФСН Р0. При этом электрон выбивается из молекулы хл Р0 и акцептируется иластохиноном, а затем передается через электронтранспортную цепь пластоцианинцитохром бкомплекс на фотоокислениую молекулу хл Р0 РЦ ФС1. Донором электронов для окисленного хл Р0 является молекула воды, которая дегидрируется Мпсодержащим водоокисляющим комплексом i, . В результате фотохимических реакций электроны поднимаются до уровня 0 мВ, что делает возможным их прямой перенос от возбужденной молекулы Р0 на молекулу ферредоксина, а затем НАДФ. На отрезке электронтранспортной цепи между двумя фотосистемами энергия запасается в виде трансмембранного электрохимического потенциала, который, в частности, конвертируется в АТФ. В процессе фототрофии могут индуцироваться два потока электронов циклический и нециклический. Интегральные и энимембранные медиаторы связывают ФС1 и ФСН в нециклическую электронтранспортную цепь так называемую схсму, но которой электроны передаются от молекулы воды к феррсдоксину. При нециклическом транспорте электронов на конечном этапе переноса образуется восстановитель НАДФН. Восстановленные молекулы НАДФН используются клеткой как доноры электронов в различных биосинтетических процессах и, в частности для восстановления СО2. Циклический перенос электронов приводит к ассимиляции энергии только в виде протондвижущей силы i, , , . Функциональная схема фотосинтетического аппарата оксигенных фототрофов представлена на рис. Оксигснная фототрофия определяется также присутствием водоокисляющего комплекса англ. ОЕС, ответственного за выделение молекулярного кислорода. Благодаря приобретению ОЕС содержащей дегидрогеназы цианобактерии стали первыми биопродуцентами кислорода, которые около 3,5 млрд. Пиисвич, Аверина, .