Влияние инактивации патогенов в концентратах тромбоцитов на функцию тромбоцитов

• Автор: Накастоев, Ислам Мухарбекович
• Шифр специальности: 14.01.21
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2013
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 86 с. : 6 ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ
Список используемых сокращений
Введение
Глава 1. Обзор литературы
Глава 2. Материалы и методы.
2.1. Получение концентратов тромбоцитов
2.2 Проведение инактивации патогенов
2.3. Характеристика реципиентов
2.4. Методы исследования
2.4.1. Получение и хранение образцов концентрата тромбоцитов
2.4.2. Определение тромбоцитарных параметров
2.4.3.Определение количества фосфатидилсерин-положительных
и Р-селектин-ноложительных тромбоцитов
2.4.4. Исследование агрегации тромбоцитов
2.4.5. Подсчет количества тромбоцитов у реципиента
2.4.6. Оценка геморрагического синдрома
2.4.7. Статистическая обработка результатов
Глава 3. Обсуждение собственных результатов.
3.1. Данные полученные на гематологическом анализаторе
«8У8МЕХ ХЕ-2100»
3.2. Определение экспозиции фосфатидилсерина и Р-селектина
3.3. Исследование агрегации тромбоцитов с различными агонистами
3.3. Клиническая эффективность трансфузии концентратов
тромбоцитов подвергнутых инактивации патогенов
Глава 4. Заключение
Глава 5. Выводы
Список литературы

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ АА - апластическая анемия АПТ - абсолютный прирост тромбоцитов БТБ - базовый тромбоцитарный буфер КТ - концентрат тромбоцитов МДС - миелодиспластический синдром ОЛЛ - острый лимфобластный лейкоз ОМЛ — острый миелобластный лейкоз ОММЛ - острый миеломонобластный лейкоз ПИ - патогенипактивация
ПИ КТ - патогенинактивированный концентрат тромбоцитов
СПТ - скорректированный прирост тромбоцитов
УФ - ультрафиолет
Фл - фемтолитр
ФС - фосфатидилсерин
CRP - collagen related peptide
IPF - фракция незрелых тромбоцитов
М - среднее значение
РЕ - фикоэритрин
Р-LCR - крупные тромбоциты, объем которых >12фл PLT - тромбоциты (platelets)
PUVA - псорален + ультрафиолет А
SD - стандартное отклонение
UVA - ультрафиолет A (UltraViolet А)

ВВЕДЕНИЕ Актуальность темы исследования Проблема инфекционной безопасности реципиентов при трансфузиях компонентов крови стала актуальной одновременно с развитием службы крови, увеличением количества переливаний и совершенствованием методов детекции трансмиссивных инфекций [1-6 ].
Точных популяционных данных по количеству трансфузий концентратов тромбоцитов до настоящего времени нет, поскольку отсутствует единый международный регистр. Тем не менее, учитывая отчеты региональных служб крови и косвенные данные, можно сделать вывод о существенном увеличении потребности в количестве и качестве концентратов тромбоцитов [2].
По данным регистра ЕВМТ (European Group for Blood and Marrow Transplantation) количество ежегодно выполняемых трансплантаций в Европейских странах с 1990 года по 2010 увеличилось с 4200 до 30 000, при этом аллогенные трансплантации составили 41% из которых 53% от неродственного донора [3]. Подобный рост трансплантационной активности сопровождается также увеличением потребности в тромбоцитосодержащих компонентах крови. Так, в Великобритании количество трансфузий тромбоцитов возросло с 4,0 на 1000 населения в 2005 году до 4,5 на 1000 населения в 2010 году и ожидаемый прирост потребности в переливаниях тромбоцитов составляет до 5% в год [4]. В абсолютном выражении в 2010 году это составило 274 000 доз тромбоцитов. В США, Финляндии, Ирландии потребность в трансфузиях концентратов тромбоцитов еще выше - порядка 6 доз на 1000 населения.
По данным Cobain T.J. и соавт., проанализировавших эпидемиологические данные по трансфузиям компонентов крови в США, Великобритании, Австралии и Дании, количество используемых доз

ГЛАВА
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Работа выполнена в Федеральном государственном бюджетном учреждении «Гематологический научный центр» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ ГНЦ М3 РФ).
2.1. Получение концентрата тромбоцитов
КТ получали из крови доноров с помощью сепаратора клеток крови MCS+ (Hemonetics, Braintree, МА, USA) в соответствии с инструкциями изготовителя. MCS+ использует принцип прерывистого потока через центрифужную разделительную камеру, в которой происходит разделение крови на компоненты под действием центробежной силы.
В нашем исследовании мы использовали тромбоциты, заготовленные в 100% плазме. КТ соответствовали требованиям, предъявляемым для проведения процедуры инактивации патогенов (таблица 5).
После тромбоцитафереза полученный концентрат помещали на тромбомиксер, где он хранился в течение 1-2 часов при постоянно помешивании до начала проведения инактивации патогенов.