Сравнительная морфологическая оценка заживления операционных ран в зависимости от способа стерилизации шовного материала

• Автор: Перевозчиков, Сергей Анатольевич
• Шифр специальности: 06.02.01
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2011
• Место защиты: Киров
• Количество страниц: 188 с. : ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1 Краткие сведения о биологии раневого процесса

1.2 Влияние шовного материала на процессы заживления в ране

1.3 Способы стерилизации шовного материала

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1 МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.2 РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

2.2.1 Эффективность стерилизации, капиллярность шёлковых лигатур
2.2.2 Морфологические изменения в операционных ранах крыс в зависимости от способа стерилизации шёлка
2.2.3 Морфологические изменения в операционных ранах кошек в зависимости от способа стерилизации шёлка
2.2.4 Динамика клинических показателей кошек после лапаротомии
в зависимости от способа стерилизации шёлка
2.2.5 Динамика гематологических показателей крови кошек после лапаротомии в зависимости от способа стерилизации шёлка
2.2.6 Морфологические изменения в операционных ранах свиней в зависимости от способа стерилизации шёлка
2.2.7 Динамика клинических показателей свиней после герниотомии в зависимости от способа стерилизации шёлка
2.2.8 Динамика гематологических показателей крови свиней после герниотомии в зависимости от способа стерилизации шёлка
3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
4. ВЫВОДЫ
5. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
6. ЛИТЕРАТУРА
7. ПРИЛОЖЕНИЯ

ВВЕДЕНИЕ
Актуальность темы. В настоящее время в ветеринарной медицине происходит постоянное увеличение объёма оперативных вмешательств и контингента животных, которым они необходимы. Так, по данным
A.B. Сапожникова (2007), на долю хирургической патологии приходится 62,6% от общего количества всех заболевших собак и кошек (при этом 67,73% составляют операционные раны).
Для соединения тканей после операции большинство хирургов пользуются наложением швов и лигатур с дальнейшей фиксацией их узлами (Кузин М.И. с соавт., 1990; Пучков К.В. с соавт., 1994; Коломейцев П.И. с соавт., 1999, 2005; Слепцов И.В. с соавт., 2000; Симбирцев С.А. с соавт., 2002; Черванёв В.А., 2006). При ушивании операционных ран кожи у животных чаще всего применяют шёлк ввиду его небольшой стоимости и высокой прочности на разрыв, хотя он и обладает рядом отрицательных свойств, в частности, выраженной капиллярностью.
При сравнительной оценке различных вариантов швов, испытании нового шовного материала осуществляют клиническое наблюдение за животными, используют планиметрические и цитологические методы оценки раны, проводят биохимическое исследование раневого секрета, ранотензиометрию (ФенчинК.М., 1979; Кузин М.И. с соавт., 1990; Абаев Ю.К., 2006). Применяются также гистологические и электронномикроскопические методы исследования. Наряду с этим, соотношение численности популяций различных клеток соединительной ткани в процессе заживления ран не учитывается. Тем временем, такой учёт позволяет глубже и полнее раскрыть различия при сравнительной оценке заживления ран, а также способствует накоплению и систематизации экспериментального материала с целью дальнейшего использования его для научного обоснования методов лечения и выбора эффективных средств оптимизации течения раневого процесса.

Шовный материал для большинства операций является единственным инородным телом, остающимся на длительный период в организме (Буянов В.Г. с соавт., 2001; Семенов Г.М. с соавт., 2002; Бонцевич Д.Н., 2005; Черванёв В.А., 2006). При этом независимо от вида шовных лигатур в месте имплантации всегда развивается воспалительная реакция, выраженность которой значительно увеличивается, если в данный процесс вмешиваются микроорганизмы (Бонцевич Д.Н., 2005; Буянов В.М. с соавт., 1993, 2001). Поэтому важным аспектом борьбы с послеоперационными осложнениями, являющимися причиной затяжного течения раневого процесса и значительного увеличения материальных затрат на лечение, служит стерилизация шовного материала (Ходаков В.В., 1994; Петров С.В., 1999; Гостищев В.К., 2002; Власенко В.М. с соавт., 2005; Абаев Ю.К., 2006).
На основании вышеизложенного, можно заключить, что определённый интерес представляют собой данные, касающиеся сравнительной клинико-морфологической оценки заживления операционных кожных ран с учётом динамики численности популяций клеток соединительной ткани в зависимости от способа стерилизации шёлка.
Цель работы:
- определить и сравнить особенности структурных изменений тканей кожи в процессе заживления операционных ран при различных способах стерилизации шёлка, отследить динамику клинических и гематологических показателей у исследуемых животных в послеоперационном периоде.
Задачи исследования:
- изучить цитоархитектонику тканей в области операционных кожных ран в процессе заживления в зависимости от метода стерилизации шёлка;
- определить динамику численности популяций различных клеток соединительной ткани в процессе заживления операционных кожных ран;
- выявить морфометрические особенности клеток новообразующейся соединительной ткани;

эффекта за 15-20 минут до операции внутримышечно вводили «Стреснил» (азаперон 40 мг/мл) в дозе 1-1,5 мл на 10 кг живой массы. Животных фиксировали в лежачем спинном положении. Выполняли веретенообразный разрез кожи вблизи грыжевого отверстия. Затем вправляли в брюшную полость содержимое грыжевого мешка и сам грыжевой мешок, а на грыжевые ворота накладывали петлевидные швы. Лишнюю кожу грыжевого мешка иссекали, на рану кожи накладывали прерывистые узловатые швы. Кожные швы у кошек снимали на 8-е, а у свиней - на 10-е сутки. За оперированными животными вели тщательное клиническое наблюдение.
Динамику течения раневого процесса при проведении экспериментальных исследований на лабораторных животных оценивали визуально и гистологически. У кошек и свиней дополнительно определяли общие физиологические показатели (температуру тела, частоту пульса и дыхания), а также проводили морфологические исследования крови. При этом учитывали возможные влияния, связанные с условиями содержания и кормления, а также беспокойство некоторых животных во время венопункции.
Визуально определяли скорость и характер заживления ран, выраженность и распространённость воспалительной реакции.
Для гематологических исследований кровь брали до кормления в утренние часы (у кошек - из латеральной подкожной вены голени, в количестве 3 мл; у свиней - из сосудов наружной поверхности ушной раковины, в том же объёме). Исследование крови проводили за 1 час до оперативного вмешательства, а также на протяжении всего послеоперационного периода в конце 1-х, 3-х, 5-х, 7-х и 10-х суток наблюдения. Количество эритроцитов и лейкоцитов определяли под микроскопом в счётной камере Горяева, гемоглобин -гемоглобинцианидным методом, скорость оседания эритроцитов (СОЭ) — микрометодом Панченкова. Лейкограмму выводили под микроскопом по