Оценка биологической эффективности применения антиоксиданта "Тиофан" в составе искусственного стартового корма для карпа

• Автор: Кобылинская, Анна Дмитриевна
• Шифр специальности: 06.02.01
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2013
• Место защиты: Новосибирск
• Количество страниц: 119 с. : ил.

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
ВВЕДЕНИЕ
Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Особенности морфофункциональной организации пищеварительной системы карпа
1.2. Роль реакций свободнорадикального окисления в регуляции физиологических функций организма и развитии различных патологических состояний
Глава 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Глава 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
3.1. Морфофункциональная характеристика кишечника личинок карпа при различных методах подращивания
3.2. Морфофункциональная характеристика кишечника и гепатопанкреаса сеголетков карпа при выращивании в условиях депрессивных водоёмов
ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
ВЫВОДЫ
ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК
ПРИЛОЖЕНИЕ

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
АКМ - активные кислородные метаболиты
АОС - антиоксидантная система
АТФ - аденозинтрифосфат
АФК - активные формы кислорода
Г АГ - гликозаминогликаны
гЭПС - гранулярная эндоплазматическая сеть
ДК - диеновые конъюгаты
ЖКТ - желудочно-кишечный тракт
КАТ - каталаза
МДА - малоновый диальдегид
ОВР - окислительно-восстановительная реакция
ПНЖК - полиненасыщенные жирные кислоты
РНК - рибонуклеиновая кислота
СОД - супероксиддисмутаза
СПОЛ - свободнорадикальное перекисное окисление липидов СРО - свободнорадикальное окисление ЭПС - эндоплазматическая сеть

ВВЕДЕНИЕ
С учётом сложившихся в последние десятилетия природных и социально-экономических условий в России, искусственное воспроизводство рыб в аквакультуре является надёжным источником получения доступной полноценной рыбной продукции для реализации её на внутреннем и мировом рынке (Мамонтов Ю. П., 2000; Богерук А. К., 2006; Крайний, А. А., 2009; Грейнджер Р., 2010). Важнейшим направлением использования водного фонда внутренних водоёмов в Российской Федерации является активное развитие пресноводной аквакультуры (Багров А. М., 2004; Гордеев А. В., 2005; Иванов Д. И. 2005; Мамонтов Ю. П., Литвиненко А. И., 2007).
Сибирский федеральный округ располагает наибольшим фондом рыбохозяйственных водоёмов (7516,6 тыс. га), составляющих около 28% озёр и 14% рек от общего водного фонда Российской Федерации (Литвиненко А. И., 2007). В этой связи Западная Сибирь является одним из перспективных регионов для эффективного ведения прудового рыбоводства. Вместе с тем, в условиях Западной Сибири, эта деятельность сопряжена с двумя важными обстоятельствами. Первое обусловлено природно-климатическими особенностями Сибирского региона и принадлежностью водоёмов Сибирского федерального округа к первой рыбоводной зоне. Это означает, что совокупность градусодней не даёт возможности выращивания объектов аквакультуры от икры до товарной рыбы за один весенне-осенний период. Большинство рыбоводных предприятий вынуждено работать по двух-трёхлетнему циклу, что значительно удорожает производство рыбопродукции (Крылов Г. С., 2004). Несмотря на огромное количество водоёмов в Западной Сибири, большинство из них являются депрессивными, что определяет вторую особенность ведения рыбохозяйственной деятельности в условиях данного региона. В рамках реализации стратегии развития аквакультуры в Российской Федерации на период до 2020 года важная роль в развитии прудового и озёрного рыбоводства отводится малым аквакультурным предприятиям. Как правило, производственная деятельность малых предприятий связана с использованием для обеспечения технологических

с - количество белка в исследуемой пробе.
МДА является одним из конечных продуктов перекисного окисления липидов и поэтому рассматривается в качестве маркера окислительного стресса. МДА относится к группе тиобарбитурореактивных веществ и при взаимодействии с 2-тиобарбитуровой кислотой (ТБК) образует хромоген, определяемый в красной области видимого спектра при длине волны 532 нм. Для определения содержания МДА в тканях рыб в центрифужную пробирку помещали гомогенат исследуемой ткани объёмом 250 мкл и добавляли 1 мл смеси трихлоруксусной кислоты и тиобарбитуровой кислоты (ТБК) (1:1). Пробирки с инкубационной смесью плотно закрывали фальгой выдерживали при 95°С 45 минут.
Охлаждённые пробирки центрифугировали при 3000 об./мин в течение 5 минут. Для определения оптической плотности кюветы с надосадком помещали спектрофотометр при длинах волн 532 нм и 580 нм против «холостой пробы», которая включала в себя фосфатно-солевой буфер и раствор ТХУ:ТБК (1:1).
Содержание малонового диальдегида в мкмоль /мг белка определяли по
формуле:
Е. Е., х4,3x1000 Е = И5---= (£,_ Е2 )х0,1 4,
где Е] - оптическая плотность опытной пробы, измеренная при длине волны 532 нм;
Е2 - оптическая плотность опытной пробы, измеренная при длине волны
580 нм;
155 - коэффициент ммоль экстинции МДА;
4,3 - разведение реакционной смеси;
5 - коэффициент для приведения концентрации белка к 1 мг;
Метод определения активности КАТ основан на способности перекиси водорода вступать в химическую реакцию с солями молибдена, образовывая при этом стойкий окрашенный комплекс жёлтого цвета. К 0,03%-ному раствору Н202 объёмом 2 мл добавляли 0,1 мл гомогената исследуемой ткани. Для обнуления показателей спектрофотометра использовали «холостую» пробу, в которой