+
Действующая цена700 499 руб.
Товаров:
На сумму:

Электронная библиотека диссертаций

Доставка любой диссертации в формате PDF и WORD за 499 руб. на e-mail - 20 мин. 800 000 наименований диссертаций и авторефератов. Все авторефераты диссертаций - БЕСПЛАТНО

Расширенный поиск

Новые источники и доноры устойчивости пшеницы к Cochliobolus sativus Drechs. ex Dastur

  • Автор:

    Смурова, Светлана Григорьевна

  • Шифр специальности:

    06.01.11

  • Научная степень:

    Кандидатская

  • Год защиты:

    2008

  • Место защиты:

    Санкт-Петербург

  • Количество страниц:

    236 с.

  • Стоимость:

    700 р.

    499 руб.

до окончания действия скидки
00
00
00
00
+
Наш сайт выгодно отличается тем что при покупке, кроме PDF версии Вы в подарок получаете работу преобразованную в WORD - документ и это предоставляет качественно другие возможности при работе с документом
Страницы оглавления работы

Глава 1. Обзор литературы
1.1. Симптомы болезней, вызываемых СосИ/іоЬоІт гай’ту
1.2 Таксономическое положение гриба С. вШІУШ
1.3. Морфология гриба С. ьсіііуш
1.4. Культивирование на искусственной питательной среде
1.5. Жизненный цикл С. тоґ/'т?
1.6. Токсинообразование
1.7. Взаимоотношения генотипов патогена и генотипов пшеницы
1.8. Исследование популяционной изменчивости С. яайтш
1.9. Особенности развития гриба в тканях пшеницы
1.10. Генетический контроль устойчивости пшеницы к темно-бурой пятнистости и корневой гнили
1.11. Селекция пшеницы на устойчивость к темно-бурой пятнистости
и корневой гнили
1.12. Скрининг генофонда пшеницы по устойчивости к темно-бурой пятнистости и корневой гнили
1.13. Защита пшеницы от болезней, вызываемых С. хаґіуш
Глава 2. Материалы и методы исследования
2.1. Материалы исследования
2.2. Методы исследования
2.2.1. Выделение С. яаНут в асептическую культуру и культивирование на плотной питательной среде
2.2.2. Методика выделения ядерной ДНК С. ъМют и проведения
ДАРБ анализа
2.2.3. Оценка устойчивости образцов пшеницы к темно-бурой пятнистости
2.2.4. Оценка устойчивости образцов пшеницы к корневой гнили
2.2.5. Гибридологический анализ наследования устойчивости
пшеницы к C. sativus
2.2.5.1. Анализ расщепления по устойчивости к темно-бурой пятнистости в гибридных популяциях
2.2.5.2. Анализ расщепления по устойчивости к корневой гнили
в гибридных популяциях
2.2.6. Статистическая обработка данных
Глава 3. Скрининг образцов пшеницы, тритикале и
эгилопсов по устойчивости к темно-бурой листовой пятнистости и обыкновенной корневой гнили
3.1. Сорта мягкой пшеницы районированные в
Российской Федерации
3.2. Образцы мировой коллекции мягкой пшеницы
3.3. Селекционный материал института селекции пшеницы Хейлунцзянской Академии Сельскохозяйственных наук
3.4. Селекционный материал института пшеницы и подсолнечника
и института защиты растений Болгарии
3.5. Редкие виды рода Triticum L
3.5.1. Темно-бурая пятнистость
3.5.2. Корневая гниль
3.6. Виды рода Aegilops L
3.7. Образцы Triticale
3.8. Определение корреляционной связи между устойчивостью
образцов пшеницы к темно-бурой пятнистости и корневой гнили
3.9. Обсуждение
Глава 4. Генетический контроль устойчивости образцов
пшеницы к темно-бурой листовой пятнистости и обыкновенной корневой гнили
4.1. Генетический контроль устойчивости к темно-бурой пятнистости
4.1.1. Характеристика образцов пшеницы, выбранных для гибридологического анализа устойчивости
4.1.2. Определение числа и аллельности генов, детерминирующих устойчивость
4.2. Генетический контроль устойчивости к корневой гнили
4.3. Обсуждение
Глава 5. Изучение структуры популяций СоскИоЬо1т яаНут
в целях районирования доноров устойчивости
5.1. Маркирование изолятов гриба признаками вирулентности
5.2. Изучение структуры популяций патогена с помощью молекулярных маркеров
5.3. Обсуждение
Заключение
Выводы
Список использованной литературы
Для проверки пригодности описанной методики для решения задач отбора устойчивых образцов пшеницы мы провели сравнение результатов лабораторного и полевого тестирования устойчивости. Для этого 41 образец пшеницы был оценен в фазе проростков по методике, описанной выше, и в фазе флаг-листа в поле. Растения опрыскивали смесью изолятов C. sativus — A3 6(4), Пр8(2), Ch 1. Концентрация спор гриба в суспензии - 4 х Ю4 конидий/мл. Инокуляцию растений в полевых условиях проводили в вечернее время, после опрыскивания растения плотно укрывали полиэтиленовыми пакетами на сутки для создания влажной камеры. На 4 - 5 сутки после инокуляции проводили учет типа реакции растений пшеницы по описанной выше шкале.
В большинстве случаев образцы пшеницы, проявившие устойчивость в лабораторных условиях, в полевых условиях также являлись устойчивыми (например, Tara, Vll-13a2-81, Long 98-4554, Long 98-4546, Long mai 23 и другие), и, наоборот, оцененные в лаборатории как восприимчивые и в поле проявляли восприимчивость (например, Owens, Sinton, Apex, Neepawa, Sumai 3 и другие) (таблица 2.2.3.2.). Некоторые устойчивые в полевых условиях образцы при испытании в лаборатории оказались восприимчивыми (например, Белорусская 12, Cadet, АК-6063-4); однако не было ни одного образца устойчивого в лабораторном тесте, но восприимчивого в поле. Коэффициент ранговой корреляции показателей типа реакции полученных в лабораторной и полевой оценках равен 0.78 ± 0.074. Таким образом, разница между типами реакции на инокуляцию взрослых растений в полевых условиях и проростков в лаборатории не велика, что позволяет применять лабораторный метод, как более простой и менее трудоемкий, для скрининга образцов по устойчивости.

Рекомендуемые диссертации данного раздела

Время генерации: 0.114, запросов: 967