Морфогенетические и цитоэмбриологические особенности онтогенеза апомиктичных растений сахарной свеклы, (Beta Vulgaris L.)

• Автор: Фоменко, Наталья Робертовна
• Шифр специальности: 06.01.05
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2003
• Место защиты: Рамонь
• Количество страниц: 172 с. : ил

ОГЛАВЛЕНИЕ
ВВЕДЕНИЕ
1. ЗНАЧЕНИЕ АПОМИКТИЧНОГО СПОСОБА РАЗМНОЖЕНИЯ ДЛЯ СЕЛЕКЦИИ
1.1. Основные понятия апомиксиса
1.2. Использование явления апомиксиса в селекции
1.3. Методы получения апомиктов
2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЙ
2.1. Условия проведения экспериментов
2.2. Исходный материал и методика проведения
исследований
3. МОРФОГЕНЕТИЧЕСКОЕ РАЗВИТИЕ САХАРНОЙ СВЁКЛЫ
3.1. Биоморфологическая характеристика апомиктичных гамма-
линий
3.2. Возрастные изменения растений сахарной свёклы в
онтогенезе
4. ЦИТОЭМБРИОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАСТЕНИЙ АПОМИКТИЧНЫХ ГАММА-ЛИНИЙ
4.1. Формирование пыльника и развитие мужского гаметофита
у растений апомиктичных гамма-линий
4.2. Формирование семязачатка и женского гаметофита у растений апомиктичных гамма-линий
4.3. Изучение развития эндосперма у апомиктов
4.4. Развитие апомиктичных зародышей
4.5. Развитие зародышей в культуре in vitro
5. ИЗУЧЕНИЕ АПОМИКТИЧНЫХ ЛИНИЙ
ПО ПРОДУКТИВНОСТИ
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ

РЕКОМЕНДАЦИИ ДЛЯ ПРАКТИЧЕСКОЕ О
ИСПОЛЬЗОВАНИЯ
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
Введение
Актуальность проблемы.
Проблема апомиктического размножения является одной из центральных в репродуктивной биологии растений и имеет существенное значение для усовершенствования методов селекции и повышения качества новых сортов, особенно у растений-перекрёстников. Являясь своеобразной формой семенного размножения, происходящей без слияния гамет, апомиксис обеспечивает материнскую наследственность, однородность потомства и высокую семенную продуктивность в неограниченном ряду поколений.
В силу специфических особенностей цитологического и эмбриологического порядков, апомиксис способствует длительному сохранению желательных признаков, позволяет копировать ценные генотипы и фиксировать эффект гетерозиса (Петров, 1979). Это является весьма актуальным для сахарной свеклы, у которой коммерческую ценность имеют только гибриды первого поколения
Процесс создания новых форм сахарной свеклы в связи с перекрестным характером опыления относится к громоздким и трудоемким, а двухлетний цикл развития в сочетании со сложным семеноводством делают свекловодство дорогостоящей отраслью сельского хозяйства. Создание у сахарной свеклы сортов - апомиктов привело бы к коренному перелому в ее селекции, поскольку удалось бы закрепить и довести до производства удачное сочетание высокого урожая и высокого сахара, ликвидировать сложную проблему поддержания компонентов, удовлетворить потребность промышленного производства в подборе отвечающих ему генотипов, а семеноводство“сделать простым и дешевым (Балков, 1997.)
Существует ряд подходов к решению этой проблемы, основанных на поиске и экспериментальном получении апомиктичных форм среди селекционных материалов при инцухтировании в высокогорных условиях (Малец-кий, 1996), самофертильных форм (Сеилова, 1996), потомств от межвидовой

по 0,2 мг/л (среда №1) и гиббереллин- 1 мг/ л, кинетин - 0,2 мг/л, индо-лилмасляная кислота - 0,05 мг/л (среда №2).
Введение в культуру проводили в летний период с растений, выращенных в поле, и в зимне-весенний - с доноров, выращенных в теплице. Эмбрио-генная способность определялась через каждые 15 дней после 28 дней культивирования.
При проведении цитологических анализов для фиксации материала применяли фиксатор Карнуа. Обработку материала и подготовку постоянных препаратов проводили по общепринятой цитологической методике путём па-рафинирования. Срезы готовили толщиной 7-10 мк. Окрашивание препаратов проводили гематоксилином по Гейденгайну.
При проведении исследований использовали методические руководства 3. П. Паушевой (1970), В. А. Пухальского (1968).
Фертильность пыльцевых зерен определяли методом окрашивания 2% раствором ацетокармина с последующим осветлением препаратов в жидкости Гойера (Юрцев, Пухальский, 1968). Фиксацию пестиков и окрашивание временных препаратов для выявления активности роста пыльцевых трубок проводили флюоресцентным методом (МагПп,1959), модифицированным для сахарной свеклы, используя в качестве красителя спирторастворимый анилиновый синий (Вайсман.Н.Я, Жужжалова Т.П, Агафонов Н.С,1984).
Определение плоидности проводили с помощью прибора поточного цитометра, специально разработанного фирмой РаПес • Германия для проведения плоидных измерений в растениях. Уровень плоидности клеток (и их численное соотношение) определяется по содержанию ядерной ДНК в клетках растений. На приборе РА возможно автоматически, быстро и очень точно измерять содержание ДНК, вплоть до различия одной хромосомы. Точным подсчётом можно измерять определённую концентрацию, т. е. количество клеток на миллилитр.