Оптимизация технологии клонального микроразмножения антуриума Андре (Anthurium andreanum Lind.) для промышленного цветоводства

• Автор: Богданова, Варвара Дмитриевна
• Шифр специальности: 06.01.01
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2011
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 147 с. : ил.

СОДЕРЖАНИЕ
ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Биологические особенности антуриума Андре
1.2. Болезни антуриума Андре
1.3. Способы размножения антуриума Андре
1.4. Антуриум Андре как горшечная культура в промышленном цветоводстве
1.5. Клональное микроразмножение, как способ ускоренного размножения и оздоровления декоративных культур
1.6. Технология микроразмножения антуриума Андре
1.6.1. Выбор экспланта и подготовка маточного растения
1.6.2. Приготовление и стерилизация эксплантов антуриума Андре
1.6.3. Введение в культуру семян антуриума Андре
1.6.4. Введение в культуру эксплантов листа, черешка, покрывала антуриума Андре
1.6.5. Введение в культуру апикальных и боковых почек антуриума Андре
1.6.6. Соматический эмбриогенез антуриума Андре
1.6.7. Ризогенез
1.6.8. Физиологические и экологические основы адаптации регенерантов к нестерильным условиям
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
ГЛАВА II. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
2.1. Место проведения и объекты исследований
2.2. Методы исследований
2.2.1. Стерилизация эксплантов
2.2.2. Введение эксплантов в культуру in vitro
2.2.3. Состав питательных сред на этапе размножения

2.2.4. Влияние минерального состава питательных сред разных авторов на побегообразование антуриума в условиях in vitro
2.2.5. Влияние гормонального состава среды на этапе размножения антуриума
2.2.6. Ризогенез и адаптация к нестерильным условиям
ГЛАВА III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
3.1. Влияние способов стерилизации на приживаемость эксплантов
3.1.1. Влияние экспозиции стерилизации на приживаемость эксплантов
3.1.2. Влияние способов стерилизации с участием антибиотиков на приживаемость эксплантов
3.1.3. Влияние концентрации стерилизующего агента на приживаемость эксплантов
3.1.4. Влияние концентрации стерилизующего агента с участием хлорамина-б на приживаемость эксплантов
3.1.5. Влияние солей серебра certisif сс 250 на приживаемость эксплантов
3.2. Введение эксплантов в культуру in vitro
3.3. Состав питательных сред на этапе размножения
3.3.1. Влияние минерального состава среды на побегообразование антуриума в условиях in vitro
3.3.2. Влияние концентрации нитрата аммония на побегообразование антуриума в условиях in vitro
3.3.3. Влияние минерального состава питательных сред разных авторов на побегообразование антуриума в условиях in vitro
3.4. Влияние гормонального состава среды на этапе размножения антуриума
3.4.1. Влияние концентрации 6-БАП на побегообразование антуриума в условиях in vitro

3.4.2. Изучение синергического действия 6-БАП и ИУК на
побегообразование антуриума в условиях in vitro
3.5. Ризогенез и адаптация к нестерильным условиям
3.5.1. Влияние состава питательной среды на ризогенез сорта Orange love в условиях in vitro и последующую адаптацию к нестерильным условиям
3.5.2. Влияние генотипа сорта антуриума на ризогенез в условиях in vitro и последующую адаптацию к нестерильным условиям
ВЫВОДЫ
РЕКОМЕНДАЦИИ ПРОИЗВОДСТВУ
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЯ

образуются без промежуточной стадии каллусообразования, таким образом исчезает вероятность сомаклональной вариабельности и аномальное перерождение растения, но при этом увеличиваются затраты на размножение. Согласно Кишвак1 (1980) и его последователям, от 5-10 почек можно получить со стебля растения антуриума Андре; сегменты побега с почкой поверхностно стерилизуют и очищают до 2мм в основании. Побегообразование поддерживается на жидкой модифицированной среде МБ, содержащей 3/8 макро солей МБ, 15% эндосперма кокосового ореха, 2% сахарозы. Через 12-18 месяцев из каждой почки развивается единственный удлиненный побег. Изолированная терминальная часть побега, состоящая из апекса побега и 2 или более листьев, помещается на мостик из фильтровальной бумаги на подобную среду. Для побегообразования базальную часть оставшихся побегов помещают в жидкую среду или устанавливают на шейкер в жидкой среде, дополненной 0,2 мг/л БАП. Культивирование продолжают около 2 месяцев. Для дальнейшего размножения терминальных черенков используют ту же среду, включающую затвердевающий агент: агар-агар или 0,18% Ое1гНе (Т.К.МагзитоШ и А.11.Кие1т1е, 1997).
В некоторых случаях используют питательную среду МБ, снижая только нитрат аммония до 400 мг/л, и добавляют 1 мг/л пантотената кальция, 0,05 мг/л биотина, 1мг/л хлоргидрат цистеина, 0,1 мг/л абсцизовой кислоты, витамины по 1мг/л, 0,2 мг/л БАП, 2 мг/л гиббереллиновой кислоты, 30 г/л сахарозы, 7 г. агара-агара на этапе введения в культуру (А. РоиреЦ Б. Веек, В. ВеЙасЫш, Б-Р. ОпевЮ, Ы. Роире!, 1985). Культивирование побегов осуществляют на подобной среде, в состав которой входит 0,5 БАП, исключая гиббереллиновую кислоту и снижая количество сахарозы до 20 г/л.
Укоренение осуществляют на ‘А МБ по макро и микро элементам, исключая гормоны, 0,75 мг/л абсцизовой кислоты, 15 г/л сахарозы, 8 г/л агара-агара.