Структурные изменения паренхимы тимуса и паратимических лимфатических узлов при экспериментальной хламидийной инфекции

• Автор: Хромцова, Галина Агоповна
• Шифр специальности: 03.03.04
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2010
• Место защиты: Тюмень
• Количество страниц: 107 с. : 50 ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ
Список сокращений_
Введение

Глава 1.

Глава 2.

Глава 3. 3.

Глава 4.

Обзор литературы_

Хламидии как возбудители различных заболеваний человека
и животных
Строение тимуса и его изменения при различных состояниях
организма
Морфология лимфатических узлов позвоночных животных в
норме и при инфекционных процессах
Материал и методы исследования
Материал исследования
Методы исследования
Строение тимуса и паратимических лимфатических узлов у интактных мышей
Особенности расположения паратимических лимфатических
узлов
Гистологическое и электронномикроскопическое строение
тимуса и его клеточный состав
Гистологическое и электронномикроскопическое строение паратимических лимфатических узлов и клеточный их состав
Морфогенез ремоделирования паренхимы тимуса и па-ратимических лимфатических узлов у мышей при экспериментальном хламидиозе
Морфологические изменения тканей тимуса мышей, зараженных Chi. psittaci
Структурные изменения тканей тимуса мышей, зараженных Chi. trachomatis
4.3 Морфологические изменения тканей паратимических лимфоузлов мышей, зараженных Chi. psittaci
4.4 Патология тканей паратимических лимфоузлов мышей, зараженных Chi. trachomatis
Глава 5. Ультраструктурная патология тимуса и паратимических лимфоузлов при хламидиозе
5.1 Нарушение субклеточных структур тимуса мышей при инокуляции Chi. psittaci
5.2 Ультраструктурные изменения в тимусе мышей при инокуляции СЫ. trachomatis
5.3 Ультраструктурные характеристики изменений паратимических лимфоузлов при инокуляции Chi. psittaci
5.4 Ультраструктурные изменения в паратимических лимфоузлах при инокуляции Chi. trachomatis
Глава 6. Коррелятивные взаимоотношения структурных изменений тканей тимуса и паратимических лимфоузлов, математическая модель и результаты ее использования для прогнозирования исхода перестройки вилочковой желе-
зы при хламидийной инфекции
Глава 7. Обсуждение полученных результатов
Выводы
Библиографический список

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
АИ - акцидентальная инволюция
АТФ - аденозинтрифосфорная кислота
ВВП - внутридольковые периваскулярные пространства
ВОЗ - всемирная организация здравоохранения
ДК - дендритная клетка
ИДК - интердигитирующая клетка
ИЛ — интерлейкин
КД - коэффициент дегрануляции
КМИ - корково-мозговой индекс
ЛПС - липополисахарид
мкм - микрометр
МНС - major histocompatibility complex (главный комплекс гистосовме-
стимости)
МОМР - основной белок наружной мембраны хламидий
ПТ - промежуточные тельца хламидий
РНК - рибонуклеиновая кислота
РТ - ретикулярные тельца хламидий
ТЕЗ - мембранная молекула - маркер кортикальных ТЭК
Т-зависимая зона - тимус-зависимая зона
ТК - тучные клетки
ТЭК - эпителиальные клетки тимуса
ФДК - фолликулярно-дендритная клетка
ХЛПС - хламидийный липополисахарид
ЭПС - эндоплазматический ретикулум
ЭТ - элементарные тельца хламидий
CD - кластер дифференцировки
Chi. psittaci - Chlamydophila psittaci
Chi. trachomatis - Chlamydia trachomatis

ГЛАВА 2. Материал и методы исследования
2.1 Материал исследования
2.1.1 Микроорганизмы
* Chlamydia psittaci - возбудитель пситтакоза, штамм «Лори», выделен в 1957 г. от попугая.
о Chlamydia trachomatis - штамм «L2», выделенный от больного венерическим лимфогранулематозом. Описание микроорганизмов приведено в «Каталоге штаммов» (вып. 4, М., 1962 г.).
Указанные виды микроорганизмов для экспериментов были предоставлены лабораторией хламидий и риккетсий НПО «Микроген», г.Пермь.
2.1.2 Лабораторные животные Исследование проводили на 80 белых двухмесячных беспородных мы-шах-самцах, массой 19,6±1,42 г. Животные предварительно прошли 2-х недельный карантин с содержанием их в виварии и проведением постоянной термометрии [39]. Работу с животными проводили с соблюдением принципов гуманности, изложенных в директивах Европейского сообщества (86/609/ЕЕС) и Хельсинкской декларации.
Инфекционный материал вводили в виде 10% взвеси очищенной ово-культуры Chi. psittaci и Chi. trachomatis (раздельно). Инфекционный титр ино-кулята для куриных эмбрионов составил 10'7LD 50/0,5 мл.
Овокультуры хламидий гомогенизировали в стерильных условиях с помощью стеклянных бус d-0,5 см, затем готовили 10% суспензию на стерильном физиологическом растворе (рН-7,0).
Животных заражали однократно внутрибрюшинно под легким эфирным наркозом. Шприц вводили в фиксированном положении вниз головой в основание кожной складки живота, каудальнее пупка, параллельно направлению складки.
Для заражения мышей использована доза инфекционной суспензии - 0,3 мл. В каждой опытной группе было по 30 мышей. 1-ой группе мышей вводили Chi. psittaci; 2-ой группе мышей вводили Chi. trachomatis. В 3-й - контрольной