Роль протеиназ объектов питания и энтеральной микробиоты в температурных адаптациях пищеварительной системы рыб разных экологических групп

• Автор: Шалыгин, Максим Владимирович
• Шифр специальности: 03.02.08
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2013
• Место защиты: Борок
• Количество страниц: 178 с. : ил.

СОДЕРЖАНИЕ
ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Пищевые взаимоотношения рыб

1.1.1. Экологические пищевые группы рыб

1.1.2. Объекты питания рыб

1.1.3. Содержание основных энергетических компонентов в пище рыб разных экологических групп

1.2. Краткая характеристика процессов пищеварения

1.2.1. Типы пищеварения

1.2.4. Активность протеиназ, функционирующих в пищеварительном тракте рыб

1.2.5. Влияние температуры и pH на активность протеиназ рыб
1.2.6. Влияние интенсивности питания и состава пищи на активность протеиназ рыб
1.3. Характеристика протеиназ потенциальных объектов питания рыб
1.3.1. Характеристика протеиназ потенциальных объектов питания ихтиофагов
1.3.2. Характеристика протеиназ потенциальных объектов питания типичных и факультативных бенто- и планктофагов
1.3.3. Зависимость уровня протеолитической активности потенциальных объектов питания рыб от температуры и pH
1.4. Характеристика гликозидаз
1.5. Микробиота пищеварительного тракта
1.5.1. Видовой состав микроорганизмов содержимого кишечника рыб
1.5.2. Зависимость видового состава и численности микроорганизмов от интенсивности питания и состава пищи рыб

1.5.3. Влияние состава пищи на соотношение различных физиологических
групп микроорганизмов
1.5.4. Зависимость видового состава и численности микроорганизмов от температуры
1.5.5. Характеристика ферментных систем микробиоты
1.5.6. Зависимость активности ферментов микроорганизмов от температуры
и pH среды
1.5.7. Микроорганизмы водных беспозвоночных животных и их
ферментативная активность
1.6. Заключение
2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Материал
2.1.1. Рыбы, исследованные в качестве консументов
2.1.2. Потенциальные объекты питания рыб
2.2. Схема опытов
2.3. Методы исследований
2.3.1. Приготовление ферментативно-активных препаратов
2.3.2. Отбор проб для микробиологических исследований
2.3.3. Наращивание биомассы микроорганизмов для определения
ферментативной активности
2.3.4. Определение протеолитической активности
2.3.5. Определение амилолитической активности
2.3.6. Статистическая обработка данных
3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
3.1. Активность протеиназ слизистой оболочки кишечника, химуса и энтеральной микробиоты у рыб разных видов из естественных водоемов

3.1.1. Активность трипсиноподобных протеиназ слизистой оболочки кишечника и химуса у рыб разных видов
3.1.2. Активность химотрипсиноподобных протеиназ слизистой оболочки кишечника и химуса у рыб разных видов
3.1.3. Активность трипсиноподобных и химотрипсиноподобных протеиназ энтеральной микробиоты у рыб разных видов
3.1.4. Активность казеинлитических и гемоглобинлитических протеиназ объектов питания рыб
3.1.5. Заключение
3.2. Влияние температуры на активность протеиназ химуса, слизистой оболочки кишечника и энтеральной микробиоты рыб разных видов из естественных водоемов
3.2.1. Влияние температуры на активность трипсиноподобных протеиназ химуса, слизистой оболочки кишечника и энтеральной микробиоты у типичных и факультативных ихтиофагов
3.2.2. Влияние температуры на активность химотрипсиноподобных протеиназ химуса, слизистой оболочки кишечника и энтеральной
микробиоты у типичных и факультативных ихтиофагов
3.2.3. Влияние температуры на активность трипсиноподобных протеиназ химуса, слизистой оболочки кишечника и энтеральной микробиоты у планкто- и бентофагов
3.2.4. Влияние температуры на активность химотрипсиноподобных протеиназ химуса, слизистой оболочки кишечника и энтеральной
микробиоты у бенто- и планктофагов
3.2.5. Влияние температуры на активность казеинлитических и
гемоглобинлитических протеиназ объектов питания рыб
3.2.6. Заключение

При 30°С максимальная активность протеиназ в желудке наблюдается при pH, близком к 2.0, в кишечнике - 9.5-10.0. При повышении температуры до 50°С оптимум pH смещается до 3.0 и 11.0 соответственно (Munilla-Morän, Sabarido-Rey, 1996).
1.2.6. Влияние интенсивности питания и состава пищи на активность протеиназ рыб
Еще в первой половине XX в. была выявлена зависимость между особенностями питания рыб и ативностью пищеварительных ферментов (Коштоянц, 1950). Позднее была установлена корреляция между интенсивностью питания и составом пищи, а также активностью ферментов у рыб разных экологических групп (Barrington, 1957; Phillips, 1969; Love, 1970; Kapoor et al., 1975; Fange, Grove, 1979; Сорвачев, 1982; Уголев, Кузьмина, 1993; Кузьмина, 2005). Показано, что в период интенсивного питания рыб при условии хорошей кормовой базы активность гидролаз максимальна, а коэффициент вариации показателя минимален (Кузьмина, 1986). При ограничении пищи (до 1/8 порции) продемонстрировано уменьшение активности трипсина у личинок амура (Peres, 1997). Аналогичное явление выявлено при сокращении рациона на 50 и особенно 75% у мальков гольца Salvelinus fontinalis (Roche-Mayzaud et al., 1998).
Однако особое внимание традиционно уделялось изучению зависимости между спектром питания рыб, составом пищи и активностью пищеварительных гидролаз (Трофимова и др., 1975; Дементьева, 1976; Щербина и др., 1977; Nagase, 1964; Kawai, Ikeda, 1972; Plantikow, 1982; Reimer, 1982). У растительноядных и всеядных видов отмечается больший уровень активности гликозидаз (особенно а-амилазы) по сравнению с хищными видами рыб. У хищных рыб, напротив, выявлена большая активность протеаз по сравнению с растительноядными рыбами (Barrington, 1957; Cockson, Bourn, 1973; Albertini-