Липиды термофильных бактерий Новой Зеландии

• Автор: Лагутин, Кирилл Александрович
• Шифр специальности: 02.00.10
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2013
• Место защиты: Владивосток
• Количество страниц: 147 с. : ил.

ОГЛАВЛЕНИЕ
Введение
1. Литературный обзор
1 Л. Термофильные бактерии
1Л Л. Открытие термофильных бактерий
1Л .2. Термофильные бактерии Новой Зеландии
1.2. Липиды бактерий
1.2.1. Жирные кислоты бактерий
1.2.2. Полярные липиды бактерий
1.3. Липиды термофильных бактерий
1.3.1. Липиды бактерий родов Thermus и Meiothermus
1.3.2. Липиды бактерий класса Bacilli
1.3.3. Липиды бактерий класса Clostridia
1.3.4. Липиды бактерий типа Cyanobacteria
1.3.5. Уникальные фосфогликолипиды, построенные на основе фосфатидилглицероилалкиламина
2. Обсуждение результатов
2.1. Липиды бактерии вида Chthonomonas calidirosea
2.1.1. Содержание общих липидов
2.1.2. Состав жирных кислот
2.1.2. Состав простых липидов
2.1.2.1. Состав нейтральных липидов
2.1.2.2. Состав бактериогопанполиолов
2.1.3. Состав фосфолипидов
2.1.3.1. Липиды Е и el
2.1.3.2. Липиды L и
2.1.3.3. Липиды М и N
2.1.3.4. Липиды Q и S
2.1.3.5. Липиды О и Р
2.1.3.6. Определение структур гликозилированных
фосфатидилглицероилалкиламинов методами ЯМР

2.1.3.7. Сравнение фосфолипидов бактерии вида С. calidirosea с
фосфолипидами бактерий видов Thermus/Meiothermus spp. и Deinococcus spp
2.2. Липиды бактерий видов Meiothermus ruber и Thermus spp
2.2.1. Содержание общих липидов
2.2.2. Состав жирных кислот
2.2.3. Состав фосфолипидов
2.2.4. Обнаружение биологического загрязнения методом 31Р-ЯМР
2.3. Липиды бактерии вида Thermogemmatispora sp. (штамм Т81)
2.3.1. Содержание общих липидов
2.3.2. Состав жирных кислот
2.3.3. Состав нейтральных липидов
2.3.4. Состав фосфолипидов
3. Экспериментальная часть
3.1. Биологические объекты
3.2. Реактивы и материалы
3.3. Приборы и оборудование
3.4. Экстракция общих липидов
3.5. Приготовление производных липидов
3.5.1. Метиловые эфиры ЖК (МЭЖК)
3.5.2. Пирролидиды ЖК
3.5.3. Гидрирование ЖК (липидов)
3.5.4. Раскрытие циклопропанового кольца
3.5.5. Диметилдисульфидные аддукты моноеновых МЭЖК
3.5.6. Диметилдисульфидные аддукты алкенов
3.5.7. Триметилсилильные прозводные гидрокси жирных кислот
3.5.8. Перацетилирование полярных липидов
3.5.9. Де-О-ацилирование полярных липидов
3.6. Анализ гликозильных групп гликолипидов
3.7. Колоночная хроматография
3.7.1. Разделение МЭЖК по степение ненасыщенности
3.7.2. Фракционирование липидов С. calidirosea
3.8. Препаративная 13ЭЖ1Х
3.8.1. Выделение свободных жирных кислот
3.8.2. Выделение индивидуальных МЭЖК

3.8.2. Выделение индивидуальных фосфолипидов
3.9. Тонкослойная хроматография (ТСХ)
3.9.1. Системы растворителей для ТСХ
3.9.2. Обнаружение веществ на ТСХ-пластинках
3.10. Количественное определение содержания фосфолипидов с использованием ядерного магнитного резонанса на ядрах 31Р (3!Р-ЯМР)
3.11. Газожидкостная хроматография
3.12. Г азожидкостная хроматография — масс-сп ектрометрия
3.13. Анализ аминокислот
4. Выводы
5. Список цитируемой литературы
6. Приложения

и 6 атомами углерода. Масс-спектр ДМДС-адцукта метилового эфира 18:1 содержал молекулярный ион т/г 326 ожидаемый для [СгіШгОгЗг]* (Рис.4), а также характеристические фрагменты с т/г 161 ([СуНізС^І4), т/г 129 ([СбН<Х)8—С'НзОН ]') и т/г 229 ([С-иНгд^]!). указывающие на положение двойной связи между 5 и 6 атомами углерода.
I -г И

-СНзОН

Ю 40 50 60 70 30 90 100 1 0 523 130 140 150 160 170 160 1» 200 210 220 230 «
270 230 280 300 310 320 ЗМ 340 350 360
Рис. 2. Масс-спектр ДМДС-адцукта метилового эфира кислоты 16:1Д5.