Метаболизм циклических нуклеотидов в лимфоидных органах жвачных животных при внешнем и внутреннем радиационном воздействии

• Автор: Щукин, Михаил Васильевич
• Шифр специальности: 03.00.01
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2000
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 181 с.

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
Функция циклических нуклеотидов в клетках животных
Пострадиационные нарушения метаболизма циклических нуклеотидов в
тканях и плазме крови
ГЛАВА 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Материалы исследований
Клинико-гематологические методы исследования
Радиоиммунологическое определение ц-АМФ и ц-ГМФ в гомогенатах тканей.

Радиоиммунологическое определение ц-АМФ с помощью набора Cyclic АМР
"Amersham"
Радиоиммунологическое определение ц-АМФ с помощью наборов Cyclic АМР
(ЧССР)
Радиоиммунологическое определение ц-ГМФ с помощью наборов
Cyclic GMP |251 (ЧССР)
Определение активности аденилатциклазы
Определение активности гуанилатциклазы
Определение активности фосфодиэстеразы
Методы определения показателей иммунобиологической реактивности
организма
Расчет доз внутреннего и внешнего облучения животных
ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
3.1. Клинико - гематологические показатели у здоровых и облученных баранов на разных стадиях острой лучевой болезни

3.2. Клинико-гематологические показатели у животных, находящихся на "чистой" и загрязненной радионуклидами территориях
3.3. Гормональный статус экспериментальных животных
3.4. Содержание циклического 3:5-аденозинмонофосфата в плазме крови
здоровых и облученных баранов на разных стадиях
острой лучевой болезни
3.5. Содержание циклического 3,5-гуанозинмонофосфата в плазме крови здоровых и облученных баранов на ранних стадиях острой лучевой болезни
3.6. Содержание циклических нуклеотидов (цАМФ и цГМФ) в плазме крови у крупного рогатого скота из "чистых" и загрязненных радионуклидами районов
3.7. Метаболизм циклических нуклеотидов в различные периоды острой лучевой болезни овец
3.8. Метаболизм ц-АМФ и ц-ГМФ в различных тканях коров, находящихся на"чистой" и загрязненной радионуклидами территории
3.9. Лизоцимная активность сыворотки крови у животных, находящихся на чистой и загрязненной радионуклидами территории
3.10. Обсемененность микроорганизмами кожного покрова крупного рогатого скота, находящегося на "чистой" и загрязненной радионуклидами территории
ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
ВЫВОДЫ:
СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЕ

СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ
АДФ - аденозиндифосфат.
АТФ - аденозинтрифосфат.
АЦ- аденилатциклаза.
БСА - бычий сывороточный альбумин.
ГДФ - гуанозиндифосфат.
ГТФ - гуанозинтрифосфат.
ГЦ - гуанилатциклаза.
КРС — крупный рогатый скот.
РИА - радиоиммуннологический анализ.
Тз - трийодтиронин.
Т4 - тироксин.
ТСГ - тироксинсвязывающий глобулин.
ФДЭ - фосфодиэстераза.
цАМФ — циклический аденозин - 3’, 5’ монофосфат. цГМФ - циклический гуанозин - 3’, 5’ монофосфат.

Шерсть в этой области легко выдергивалась. К 20-ым суткам на месте выпавшей шерсти появлялась новая и вплоть до конца наблюдений в клинической картине не было установлено каких-либо характерных особенностей. Следует отметить, что не у всех животных были отмечены частичные эпиляции, однако у всех на 10-15-е сутки отмечалось уменьшение прочности удерживания шерсти в месте максимального облучения.
Температура, пульс, дыхание у всех баранов 1-ой группы с 1 по 30-е сутки не отличались от нормы. Однако в картине крови были установлены характерные для острой лучевой болезни изменения. До облучения содержание лейкоцитов в венозной крови составляло 9,84т^0,56 тыс./мм3. Через 30 мин. и 3 ч после облучения оно увеличилось и составляло 10,20+0,66 и 9,61+0,97 тыс./мм3 соответственно (Р>0,05). На 1-е и 2-е сутки содержание лейкоцитов фактически оставалось на одном уровне (табл.1, рис. 1), а затем постепенно снижалось вплоть до 5-х суток. Уровень лейкоцитов в этот период был минимальным и составлял 7,07+0,62 тыс./мм3 (Р<0,05).
Таблица 1. Содержание лейкоцитов в крови контрольных и облученных баранов (тыс/мм3).
Группы животных
Сроки иссле- 1 группа 2 группа
дования Контроль 0,96 Гр % к контролю 3,84 Гр % к контролю
1 2 3 4 5
До облучения 8,18 ±0,84 9,84 ± 0,56 100 9,44 ± 0,42
После облучения: 30 мин 8,95 ±0,55 10,20 ±0,66 114,0 11,20 ±0,33 125,1