Ионоселективные электроды для определения катионных поверхностно-активных веществ и физиологически активных аминов

• Автор: Шабарин, Александр Александрович
• Шифр специальности: 02.00.02
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 1999
• Место защиты: Саранск
• Количество страниц: 161 с. : ил.

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР
I. I. Методы определения катионных ПАВ и некоторых физиологически активных аминов
1.2. Потенциометрия с ЙСЭ
1.3. Оценка селективности определения при использовании

1.4. Ионоселективные электроды для определения катион-
ных ПАВ и физиологически активных аминов
1.5. Проточно-инжекционные способы определения КЛАВ и
физиологически активных аминов
ГЛАВА 2. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
2.1. Используемые вещества. Приготовление растворов
2.2. Методика изготовления ИСЭ
2.3. Методика определения констант экстракции тетрафе-
нилборатов и лаурилсульфатов ЧАС и ФАА
2.4. Схемы установок и методика проведения эксперимента
ОПРЕДЕЛЕНИЯ КАТИОННЫХ ПАВ И ФИЗИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ АМИНОВ
3.1. Сравнительная характеристика ИСЭ с мембранами раз-
личного типа
3.2. Влияние pH на ионометрическое определение катион-
ных ПАВ и некоторых физиологически активных аминов
3.3. Влияние неорганических анионов на селективность
ионометрического определения ФАА
ГЛАВА 4. ВЛИЯНИЕ ПАРАМЕТРОВ ЭКСТРАКЦИИ И
РАСТВОРИМОСТИ НА СЕЛЕКТИВНОСТЬ ИСЭ
4.1. Зависимость между коэффициентами потенциометри-
ческой селективности и константами экстракции ионных ассоциатов
4.2. Зависимость между коэффициентами потенциометри-
ческой селективности и коэффициентами распределения ЧАС и некоторых ФАА в системе нитробензол-вода *
4.3. Взаимосвязь между Кдпот и произведением растворимос-
ти тетрафенилборатов катионных ПАВ и некоторых

ГЛАВА 5. ВЫБОР ОПТИМАЛЬНЫХ УСЛОВИЙ РАБОТЫ
ПРОТОЧНО-ИНЖЕКЦИОННОЙ СИСТЕМЫ С ИСЭ
5.1. Выбор состава потока-носителя
5.1.1. Выбор состава потока-носителя для определения некоторых физиологически активных аминов
5.1.2. Выбор состава потока-носителя для определения катионных ПАВ типа ЧАС
5.2. Зависимость величины выходного сигнала от объема
пробы
5.3. Зависимость величины выходного сигнала от скорости
потока-носителя
5.4. Зависимость величины выходного сигнала от длины ре-
акционной спирали
5.5. Выбор диаметра канала проточной ячейки
ГЛАВА 6. ПРОТОЧНО-ИНЖЕКЦИОННОЕ И ПРОТОЧНОЕ ОПРЕДЕЛЕНИЕ КАТИОННЫХ ПАВ И НЕКОТОРЫХ ФИЗИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ АМИНОВ
6.1. Определение основных характеристик ИСЭ в потоке
6.2. Изучение динамики отклика ИСЭ
6.3. Проточное определение катионных ПАВ
6.4. Оценка селективности методик проточного и проточно-
инжекционного ионометрического определения катионных ПАВ в присутствии неорганических катионов
ГЛАВА 7. ОПРЕДЕЛЕНИЕ КАТИОННЫХ ПАВ И ФИЗИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ АМИНОВ В НЕКОТОРЫХ ОБЪЕКТАХ
7.1. Определение некоторых физиологически активных ами-
нов в искусственно приготовленных растворах
7.2. Определение некоторых физиологически активных ами-

нов в различных лекарственных формах
7.3. Определение содержания катионных ПАВ в технических
препаратах
7.4. Определение катионных ПАВ в сточных водах
ВЫВОДЫ
ЛИТЕРАТУРА

Пластифицированные ИСЭ на основе 2,3,4-тринонилокси-бензолсульфонатов ЧАО и ФАА (ТНОБСЭ) изготовляли аналогичным образом. Дибутилфталатные растворы ионного ассоциата получали ионообменной экстракцией. Для этого к 5 мл насыщенного раствора 2,3,4-тринонилоксибезолсульфоната калия в ДБФ прибавляли по 10 мл 0,01 М растворов ЧАС или ФАА, встряхивали в течение 10-15 минут, после разделения фаз органическую фазу промывали дистиллированной водой.
2.3. Методика определения констант экстракции теграфенилборатов и лаурилсульфатов ЧАС и ФАА
Константы экстракции тетрафенилборатов и лаурилсульфатов ЧАС и ФАА определяли следующим образом. Вначале определяли константу экстракции тетрафенилбората- и лаурилсульфата фуксина. Для этого 10 мл хлороформного раствора ТБФ- или ЛС- фуксина взбалтывали с 10 мл воды, насыщенной хлороформом в течение 30 минут, Пос-

ле отстаивания и разделения фаз измеряли оптическую плотность водного слоя и вычисляли равновесную концентрацию ионов фуксина. Принимали, что концентрации катионов фуксина и противоионов (ТФБ~ или ЛСД в водной фазе одинаковы. Тогда
т;,ех Со(ФАН)о - [Ф ]в ) ч
к = щ 00 I
где Со(ФАН)о - исходная концентрация тетрафенилборат- либо лаурил-сульфат фуксина в хлороформе; [Ф+]в - равновесная концентрация ионов фуксина в водной фазе.