Цитогенетические основы гибридной стерильности грызунов

Цитогенетические основы гибридной стерильности грызунов

Автор: Сафронова, Лариса Дмитриевна

Шифр специальности: 03.00.08

Научная степень: Докторская

Год защиты: 2004

Место защиты: Москва

Количество страниц: 340 с. ил.

Артикул: 2636875

Автор: Сафронова, Лариса Дмитриевна

Стоимость: 250 руб.

ВВЕДЕНИЕ.
ГЛАВА 1. ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР
1. Межвидовая и внутривидовая гибридная стерильность самцов как одна из форм нарушения фертильности
1.1. Стерильность самцовгибридов между различными
видами отрядов грызунов.
1.1.1. Гибридная стерильность у мышей.
1.1.2. Гибридная стерильность у грызунов других родов.
1.1.3. Вероятные причины стерильности гибридных самцов 2.Г
1.1.4. Генетический контроль изолирующих механизмов.
1.2. Стерильность, обусловленная комплексом домовой МЫШИ.
1.2.1. Молекулярная структура комплекса.3 о
1.2.2. Проблемы эволюции структур комплекса.
1.2.3. Взаимосвязь эффекта и стерильности. .
1.2.4. Обнаружение специфических генов стерильности.
1.3. Специфические гены гибридной стерильности
2. Цитология и генетика сперматогенеза
2.1. Цитологический механизм гаметогенеза .з
2.2. Генетические механизмы сперматогенеза
3. Поведение половых хромосом в течение мейоза
3.1. Мейозусамки
3.2. Мейозусамца
3.3.1 Последствия Ххромосомной инактивации для зародышевых клеток.
3.3. . Вероятные функции I.
4. Цитогенетические механизмы возникновения мужской стерильности.
4.1. Роль I в гаметогенезе самцов и недостаточность
репарации двуцепочечных разрывов
4.2. Ассоциации полового бивалента с аутосомами
4.3. ЭМ анализ синаптонемных комплексов гибридов .
ГЛАВА МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ.
1. Материал.
1.1. Мыши лабораторные
1.1.1. Лабораторные мыши носители гаплотипов 6, 2, 2, 8, , 1, 5 x, полученные на основе коллекции
1.1.2. Гетерозиготы 6 8, 2 8, 8, 8, 1.
1.1.3. Гетерозиготы Робертсоновской транслокации 8,, несущие различные гаплотипы 6, 2, 2, 8, , 1, v5 .
1.1.4. Мышиносители реципрокной транслокации ,
1.1.5. Мыши, гомозиготные по Робертсоновсой транслокации ЕМ
1.2. Лабораторные грызуны других родов.
1.2.1. Хомяки рода . и .i.
1.2.2. Крысы vi линии i и беспородные
1.3. Дикоживущие мыши и различных видов.
1.3.1. i Куба, Перу, Сев. Кавказ, i Прикаспий,
i Азербайджан, i Армения, iМолдова. . . .
1.3.2. vii Киевская область, . i Восточная Украина.
1.4 Гибриды лабораторных и диких мышей.
1.4.1 Гибриды I i х . . . .
1.4.2 Гибриды i x . i Куба.
1.4.3. Гибриды 2 Vi x . .
1.5. Гибридные грызуны других родов полевки, хомяки,
1.5.1 Полевки гибриды рода i .
1.5.2. Полевки гибрид возвратного скрещивания 1 i i x .i x .i
1.5.3. Хомяки рода Ркос1ориз гибриды от прямого, реципрокного и возвратного скрещивания видов РИ. и РИ. сатрЬеШ.
1.5.4. Крысы БаНш гаПив 2п х ЯаШв ДацресШв 2п
2. Методы го
2.1 Генетические методы исследования
2.1.1. Определение плодовитости самцов
2.1.2 Определение нарушения соотношения передачи потомству гетерозиготных самцов мышей. . . .
2.2. Цитогенетический анализ.
2.2.1. Световая микроскопия митотические хромосомы, мейотические хромосомы в первой профазе мейоза диакинезе.
2.2.2 Электронномикроскопический анализ препаратов распластанных сперматоцитов
2.3. Молекулярный анализ гз .
2.3.1. Блотгибридизация
2.3.2. Полимеразная цепная реакция ПЦР
2.4. Статистический анализ . гз
Глава III РЕЗУЛЬТАТЫ
3.1. Экспериментальные данные на основе стоков мышеи, несущих различные Ьгаплотипы коллекция I
комплсксных мышей. МО
3.1.1 Выявление животныхносителей игаплотипов в выборках мышей из природных популяций с помощью генетического анализа
3.1.2 База данных на основе коллекции комплексных мышей
3.1.3. Молекулярногенетический анализ ДНК мышей, несущих комплекс, и других грызунов
3.1.4. . Оценка комплементации по жизнеспособности и плодовитость и самцов мышей, несущих различные гаплотипы компаунды хГу. 4еГ
3.2. Поведение мейотических хромосом у самцов мышей, несущих гаплотипы.
3.2.1. Цитогенетическое исследование поведения мейотических хромосом у компаундов су
3.2.2. Светомикроскопический анализ синаптонемных комплексов у гетерозиготных самцов БЫЛ п
3.2.3 Поведение мейотических хромосом у мышей, несущих комплекс, гетерозиготных по транслокациям ЯЬ1 и Т,.
3.2.4. Анализ взаиморасположения ЯЬтривалента ТК, хромосомы, несущей игаплотип, и Хбивалентов в связи с плодовитостью и генотипом мышей гетерозиготных носителей различных гаплотипов и траислокаций ЯЫ и Т1б,
3.2.5. Нарушение соотношения передачиТЯВ комплекс потомству структурных гетерозигот, несущих различные гаплотипы и Робертсоновскую транслокацию ЯЬ 8, ет.
3.3. Генетический анализ плодовитости и ЭМ исследования влияния повышенного радиационного фона в километровой зоне ЧАЭС на самцов мышей, несущих летальные гаплотипы
3.4. Анализ цитогенетических особенностей, сопровождающих эффект гибридной стерильности у самцов различных видов грызунов.
3.4.1. Световая микроскопия и ЭМ анализ СК сперматоцитов гибридов, полученных в результате скрещиваний различных видов диких и лабораторных мышей
3.4.2. Световой и ЭМ анализ СК сперматоцитов гибридных форм полевок рода МюгоШл.2 о
3.4.3. Световой и ЭМ анализ СК сперматоцитов гибридных форм полевок рода Тегпсо1а.
3.4.4. ЭМ анализ С К сперматоцитов гибридов крыс первого поколения И1 при гибридизации ЯаПив 1ау1ресиз 2п из Вьетнама с ЯаПиэ гаПиг 2п из Эстонии2.
3.5. Гибриды хомячков Рйос1ори випогиз и Рйосориз сатрЬеШ.
3.5.1 Параметры развития репродуктивной системы 2.
3.5.2. Кариотипы исходных видов и гибридов рода РИос1орш.
3.5.3. Нарушения на стадии первого деления мейоза у межвидовых гибридов хомячков РкосЬрил и.сатрЪеШ СВ анализ
3.5.4. Мейотические аномалии у межвидовых гибриде П РИос1ория и.сатрЪеШ прямого и реципрокного скрещивания
3.5.5. Сравнительный световой и ЭМ анализ СК сперматоцитов хомячков рода РИосориз РИ. гип и РИ. сатрЬеШ от прямого, реципрокного и комбинации возвратных скрещиваний
Глава 1У. ОБСУЖДЕНИЕ
4.1. Аномалии СК у плодовитых гетерозигот Ю 1 Т
4.2 .Аномалии СК у стерильных гетерозигот Ш1ТН. . .
4.3 Генетические и цитогенетические особенности гетерозигот ЯЫА.
4.4. СК у гетерозиготных самцов ЯЫ А.
4.5. Причины стерильности дигетерозигот по разным Ь
гаплотипам.
4.6. Возможная роль интеркаллярной ДНК в стерильности
компаундов.
4.7. Физиологические механизмы стерильности компаундов
4.8. Анализ гибридной стерильности различных таксономических групп грызунов.
4.8.1. Гибриды мышей.
4.8.2 .Гибриды крыс КаМиг гаНш X ЯаШауресШ
4.8.3. Гибриды трех видов серых полевок группы агvi
4.8.4. Гибриды полевок рода Теггсоа
4.8.5. Гибриды хомячков РИосориг .ш и РИ. сат
ЗАКЛЮЧЕНИЕгб
ВЫВОДЫ.3
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ


Аллельное поведение гаплотипов могло объясняться частичным сходством хромосомных перестроек аберраций в отдельных участках ДНК , е. Однако данная гипотеза не имела какихлибо цитогенетических доказательств, поскольку при электронномикроскопическом исследовании не было обнаружено никаких свидетельств структурных нарушений инверсионных петель или делеций и др. Подобная картина могла наблюдаться в том случае, если структурные перестройки хромосом комплекса расположены сериями небольшой протяженности и, возможно, разграничены участками не инвертированной ДНК , е. Окончательное доказательство того, что комплекс представляет собой серию инверсий, было получено только с помощью методов молекулярного анализа. Первые специфические зонды к комплексу были получены в году X. Лерахом с помощью микродиссекций метафазных хромосом мыши . Использование этих микрофрагментов хромосом в качестве проб при блотгибридизации с ДНК мышей, несущих различные варианты комплекса, подтвердило предположение о наличии в нем по крайней мере двух инверсий проксимальной начинающейся от центромеры и дистальной включающей МНСкомплекс, разделенных участком не инвертированной ДНК Рис. Процессы неравного кроссинговера, генной конверсии и внутрихромосомной рекомбинации могут служить основным источником вариабельности проявления характерных фенотипических особенностей гаплотипов и структурного полиморфизма данной области генома. Различные варианты комплекса гаплотипы действительно обладают вариабельностью структуры и широким спектром проявления типичных свойств. Кроме того, как для комплекса, так и для соответствующего участка хромосомы дикого типа характерно присутствие ряда полиморфных последовательностей ДНК, наличие которых, наряду с существованием тандемных дупликаций и обилием псевдогенов в некоторых областях комплекса дает возможность данному району хромосомы домовой мыши эволюционировать быстрее, чем большинству других геномных областей у этого вида x , , . Дальнейший молекулярногенетический анализ, проводившийся с использованием ряда независимых ДНКпроб, полученных с помощью микродиссекции метафазных хромосом мыши и с использованием кДНК хромосомы , показал наличие в комплексе четырех парацентрических инверсий, получивших согласно своей локализации наименование прицентромерной, проксимальной, медиальной и дистальной . Прицентромерная, проксимальная, медиальная инверсии разделены короткими участками не инвертированной ДНК, тогда как дистальная вплотную прилегает к медиальной . Рис. Рецессивные летальные мутации гаплотипов не являются однородной группой. Летальные мутации, вызывающие сходные нарушения в эмбриогенезе и гибель зигот на одних и тех же стадиях развития, объединяются в одну комплементационную группу. К настоящему времени насчитывается до комплементационных групп i, . Рис. Другое интригующее свойство гаплотипов преимущественная передача несущей хромосомы потомству гетерозиготных самцов ii i ii долгое время оставалось основным объектом пристального внимания генетиков и эволюционистов. Полные гаплотипы природного происхождения то есть имеющие полную протяженность инверсий имеют, как правило, уровень около , . Частичные рекомбинантные гаплотипы показывают широкий спектр изменчивости данной характеристики от высокой, приближающейся к величинам полных гаплотипов, до крайне низкой не более десяти процентов , , . Молекулярногенетические методы, прежде всего блотгибридизация с специфическим ДНКпробами, позволили обнаруживать в природных популяциях мышей носителей гаплотипов, в том числе и таких, которые невозможно было выявить только гибридологическими методами, то есть с помощью скрещиваний с особями, несущими маркерную мутацию Т, вызывающую отсутствие хвоста у гетерозигот. Распространение и фиксация гаплотипов в популяциях определяются сбалансированным соотношением действия генетических факторов летальности и преимущественной передачи несущей хромосомы потомству. Абсолютное большинство известных полных гаплотипов природного происхождения характеризуется высоким уровнем нарушения соотношения передачи и наличием рецессивных деталей , , .

Рекомендуемые диссертации данного раздела

28.06.2016

+ 100 бесплатных диссертаций

Дорогие друзья, в раздел "Бесплатные диссертации" добавлено 100 новых диссертаций. Желаем новых научных ...

15.02.2015

Добавлено 41611 диссертаций РГБ

В каталог сайта http://new-disser.ru добавлено новые диссертации РГБ 2013-2014 года. Желаем новых научных ...


Все новости

Время генерации: 0.195, запросов: 145