Состояние эндокринной системы у животных при облучении и в условиях производства на загрязненной радионуклидами территории

Состояние эндокринной системы у животных при облучении и в условиях производства на загрязненной радионуклидами территории

Автор: Лысенко, Николай Петрович

Шифр специальности: 03.00.01

Научная степень: Докторская

Год защиты: 2000

Место защиты: Москва

Количество страниц: 564 с. ил.

Артикул: 270489

Автор: Лысенко, Николай Петрович

Стоимость: 250 руб.

Состояние эндокринной системы у животных при облучении и в условиях производства на загрязненной радионуклидами территории  Состояние эндокринной системы у животных при облучении и в условиях производства на загрязненной радионуклидами территории 

СОДЕРЖАНИЕ
Название раздела Стр.
1. ВВЕДЕНИЕ.
2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
2.1. Роль гипоталамогипофизнадпочечниковой системы в регуляции реакции организма при воздействии чрезвычайных раздражителей
2.1.1. Структурнофункциональная связь гипоталамуса, гипофиза и надпочечников.
2.1.2. Физиологическая роль основных адаптивных гормонов гипоталамогипофизнадпочечниковой системы кортикотропина и кортизола
2.2.Функциональное состояние гипоталамогипофизтиреоидной системы у животных при различных физиологических и патологических состояниях
2.2.1. Биосинтез и механизм действия тиреоидных гормонов
2.2.2. Секреция гормонов щитовидной железой.
2.2.3. Иоддефицитные заболевания эндемический зоб
2.3. Циклические нуклеотиды как посредники действия белковых и полииептидных гормонов в клеткахэффекторах.
2.4. Просгагландины и их взаимное влияние с гормонами и циклическими нуклеотидами на обмен веществ.
2.5. Роль прогестерона, эстрадиола и тестостерона в рефляции функции воспроизводства в организме животных.
2.6. Роль инсулина в регуляции углеводного обмена.
2.7.Реакция гипоталамогипофизнадпочечниковой системы при воздействии на организм животных чрезвычайных раздражителей нерадиационной природы
2.8. Особенности действия острого и хронического облучения на организм животных.
2.8.1. Общие закономерности внешнего облучения организма.
2.8.2. Общие закономерности внутреннего облучения организма.
2.8.3. Особенности поражения продуктами ядерного деления.
2.9. Действие ионизирующего излучения на нейроэндокринную систему.
2.9.1. Реакция гипоталамогипофизнадпочечниковой системы при воздействии на организм животных ионизирующей радиации
2.9.2. Реакция системы гипофиз щитовидная железа на облучение.
2.9.3. Реакция системы гипофиз половые железы на облучение животных.
2 Действие хронического облучения на эндокринную систему.
2 Особенности внутреннего облучения
. Реакция гипофиза и надпочечников на внутренне облучение.
. Реакция системы гипофиз щитовидная железа на внутреннее облучение.
. Реакция системы гипофиз гонады на внутреннее облучение
2 Состояние системы циклических нуклеотидов цЛМФ и цГМФ при воздействии на организм животных ионизирующей радиации.
3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ.
3.1. Материалы исследования.
3.2. Клиникогематологические методы исследования
3.3. Радиоиммунологические методы исследования гормонов
3.3.1. Определение общего кортизола в сыворотке крови животных радиоиммунологическим методом
3.3.2. Радиоиммунологическое определение кортизола в ткани надпочечников
3.3.3. Радиоиммунологическое определение связанного с белками сыворотки крови и свободного кортизола
3.3.4. Радиоиммунологическое определение кортикотропина в плазме крови животных.
3.3.5. Радиоиммунологическое определение содержания АКТГ в гипофизарной ткани
3.3.6. Радиоиммунологическое определение цАМФ и цГМФ в гомогенатах тканей.
3.3.6.1. Радиоиммунологическое определение цАМФ с помощью наборов i
3.3.6.2. Радиоиммунологическое определение цАМФ с помощью наборов i АМР ЧССР
3.3.6.3. Радиоиммунологическое определение цГМФ с помощью наборов i 5 I ЧССР
3.4. Определение кортиколибериновой активности гипоталамуса животных
3.5. Определение скорости биосинтеза АКТГ гипофизарной тканью радиоизотопным методом
3.6. Определение скорости биосинтеза СТГ и ЛТГ гипофизарной тканью радиоизотопным методом.
3.7. Определение активности ферментов метаболизма
циклических нуклеотидов
3.7.1. Определение активности аденилатциклазы.
3.7.2. Определение активности гуанилатциклазы.
3.7.3. Определение активности фосфодиэстеразы циклических нуклеотидов.
3.8. Радиоиммунологическое определение концентрации простагландинов Е и Р2а в гомогенатах тканей.
3.9. Радиологические исследования
3.9.1. Отбор и подготовка проб
3 Расчет доз внутреннего и внешнего облучения животных
3 Методы исследования системы гемостаза
3 Статистическая обработка результатов
4. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ ОСТРОЙ ЛУЧЕВОЙ БОЛЕЗНИ У БАРАНОВ.
4.1. Клиникогематологические показатели у баранов на разных стадиях острой лучевой болезни легкой и средней степени тяжести
4.2. Содержание кортизола в сыворотке крови и надпочечниках контрольных и облученных баранов
4.2.1. Содержание общего, связанного и свободного кортизо
ла в сыворотке крови здоровых и облученных животных на разных стадиях лучевой болезни.
4.2.2. Содержание кортизола в надпочечниках контрольных и облученных животных на разных стадиях лучевой болезни
4.3. Содержание кортикотропина в плазме крови и гипофизе контрольных и облученных баранов
4.3.1. Содержание кортикотропина в плазме крови здоровых и облученных животных на разных стадиях острой лучевой болезни
4.3.2. Содержание кортикотропина в аденогипофизах здоровых и облученных баранов на разных стадиях лучевой болезни
4.4. Скорость биосинтеза кортикотропного гормон i vi в гипофизах здоровых и облученных баранов по данным радиоизотопного анализа.
4.5. Скорость биосинтеза СТГ и ЛТГ i vi в гипофизах здоровых и облученных баранов по данным радиоизотопного анализа.
4.6. Кортиколибериновая активность экстрактов срединного возвышения гипоталамуса здоровых и облученных баранов.
4.7. Содержание цАМФ в тканях гипоталамуса, аденогипофиза и надпочечников здоровых и облученных баранов в разные периоды острой лучевой болезни
4.7.1. Содержание цЛМФ в тканях гипоталамусов здоровых и облученных баранов
4.7.2. Содержание цАМФ в тканях аденогипофизов здоровых и облученных животных
4.7.3. Содержание цАМФ в тканях надпочечников здоровых и облученных баранов.
4.8. Содержание цГМФ в тканях гипоталамуса, аденогипофиза и надпочечников здоровых и облученных баранов в разные периоды острой лучевой болезни
4.8.1. Содержание цГМФ в ткани гипоталамусов здоровых и облученных баранов
4.8.2. Содержание цГМФ в ткани аденогипофизов здоровых и облученных баранов
4.8.3. Содержание цГМФ в ткани надпочечников здоровых и облученных баранов
5. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ В УСЛОВИЯХ ЧЕРНОБЫЛЬСКОГО ЗАГРЯЗНЕНИЯ СРЕДЫ.
5.1. Радиологическая обстановка в экспериментальных хозяйствах Гомельской и Брянской областей в период исследований
5.2. Результаты прижизненного контроля радиоактивной загрязненности животных
5.3. Результаты определения поглощенных доз.
5.4.Клиническое состояние животных находящихся в условиях радионуклидного загрязнения среды различной плотности.
5.5. Гематологические показатели у крупного рогатого скота, находящегося на чистой и загрязненной радионуклидами территории.
5.5.1. Гематологические показатели у крупного рогатого скота, находящегося на чистой территории
5.5.2. Гематологические показатели у К.Р.С. в условиях радионуклидного загрязнения среды.
5.6. Результаты исследования системы гемостаза у крупного рогатого скота, находящегося на чистой и загрязненной территории.
5.7. Результаты исследования гормонального статуса крупного рогатого скота находящегося на чистой и загрязненной радионуклидами территории.
5.8. Гормональный статус коров находящихся на разных сроках стельности.
5.9.Содержание цАМФ и цГМФ в плазме крови крупного рогатого скота, находящегося на чистой и загрязненной радионуклидами территории.
5 Метаболизм цАМФ и цГМФ в различных тканях коров
находящихся на чистой и загрязненной территории.
5Простагландины Е и Р2а в различных тканях и крови КРС находящихся на чистой и загрязненной радионуклидами территории
6. ОБСУЖЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ
6.1. Обсуждение результатов исследования ОЛБ у баранов.
6.2. Обсуждение результатов исследования КРС находящегося в условиях чернобыльского загрязнения среды.
6.2.1. Радиологическая обстановка после чернобыльской катастрофы.
6.2.2. Анализ радиологической обстановки в экспериментальных хозяйствах после чернобыльской катастрофы
6.2.3. Биологические последствия для КРС от чернобыльского загрязнения местности.
6.2.3.1. Анализ результатов клинической диспансеризации и гематологических исследований животных
6.2.3.2.Анализ результатов исследования системы гемостаза у крупного рогатого скота, находящегося на чистой и загрязненной территории.
6.2.3.3. Анализ результатов исследования гормонального статуса крупного рогатого скота находящегося на чистой и загрязненной радионуклидами территории.
6.2.3.4.Анализ результатов гормонального статуса коров на разных сроках стельности в условиях чистых и загрязненных хозяйств.
6.2.3.5. Диализ результатов исследования содержания циклических нуклеотидов в плазме крови крупного рогатого скота находящегося на чистой и загрязненной радионуклидами территории.
6.2.3.6. Анализ результатов исследования метаболизма цАМФ и цГМФ в различных тканях крупного рогатого скота находящегося на чистой и загрязненной радионуклидами территории.
6.2.3.7. Анализ результатов исследования уровня простагландинов в крови и тканях крупного рогатого скота находящегося на чистой и загрязненной радионуклидами территории.
7. ЗАКЛЮЧЕНИЕ
8. ВЫВОДЫ
9. РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ НАУЧНЫХ ВЫВОДОВ
. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
. ПРИЛОЖЕНИЯ.
1. ВВЕДЕНИЕ
Актуальность


Активность этого фермента ингибируется Са , а активизируется ионами 2 и Мп2 При этом также важную роль играют липиды мембран, которые способны оказывать свое влияние на взаимодействие гормонов с рецепторами, а также на реакцию связывания и активации аденилатциклазы Дж. Леви, и др. Под действием рилизинггормонов происходит активация аденилатциклазы, приводящая к образованию цАМФ, внутриклеточный эффект, которого опосредован через цАМФ зависимую протеин киназу. Очевидно, цАМФ в аденогипофизарных клетках действует как общий медиатор их протеинкиназы, но проявление его эффектов зависит от внутренних кинетических свойств, включаемых процессов Дж. Леви, и др. Под действием активированной цАМФ протеинкиназы происходит усиление биосинтеза гипофизарных гормонов на уровне трансляции за счет фосфорилирования белков рибосом . При воздействии на клеткиэффекторы коры надпочечников АКТТ взаимодействует с рецепторами, расположенными на внешней стороне клеточной мембраны. Важную роль при атом играют сиаловые кислоты. После связывания АКТГ с рецептором происходит активация аденилатциклазы, расположенной на внутренней стороне мембраны СапФ В. Ег а1. Для активации аденилатциклазы абсолютно необходимы ионы Са2 ЬсАсолуйг Я. С. е1 а1. Аденилатциклаза катализирует превращение АТФ в цАМФ, который активирует протеин киназу. Накопление цАМФ в коре надпочечников сопровождается также активацией фермента фосфорилазы, усиливающей гидролиз гликогена, снабжая клетки глюкозо6фосфатом, окисляющимся в пентозном цикле с образованием большого количества НАДФН, необходимого для реакции гидроксилирования в процессе биосинтеза глюкокортикоидов Дж. Лсви, и др. Анализ приведенных литературных данных позволяет сделать вывод, что основная роль цАМФ и цГМФ заключается в реализации биологического действия рилизинггормонов и АКТГ на клеткиэффекторы. Нарушение функционирования системы циклических нуклеотидов может привести к извращению гормонального воздействия на железымишени и нарушению функционирования гипоталамогипофизнадпочечниковой системы как единого целого. Простагландины и их взаимное влияние с гормонами и циклическими нуклеотидами на обмен веществ. Простагландины являются гидроксилированными продуктами превращения в организме полиненасьпценных жирных кислот. Они состоят из атомов углерода и включают циклопентановое кольцо. В зависимости от структуры пятичленного кольца все простагландины делят на четыре группы А, Б, Е и Ф ПГА, ПГБ, ПГЕ и ПГФ, а в зависимости от числа двойных связей в боковых цепях в каждой из групп различают индивидуальные простагландины, обозначаемые буквой, выражающей принадлежность к группе, и цифрой, показывающей число двойных связей в боковых цепях ПГА1 ПГА2 и т. Источниками субстрата для биосинтеза простагландинов в организме являются фосфолипиды клеточных мембран в ответ на нейрогормональную стимуляцию. Наиболее распространенным субстратом при этом является арахидоновая кислота. Однако в центральной нервной системе и мышце сердца, простагландины образуются еще и из докозагсксаеновой и докозапентаеновой кислот, а тестикулах еще из докозатетраеновой кислоты. Включение в биосинтез последних субстратов приводит к получению различающихся направленностью действия промежуточных и конечных продуктов, обладающих высокой биологической активностью . I., V . И.С. Ажгихин, . В организме человека обнаружено и идентифицировано естественных простагландинов, не считая гидроксилированных производных групп Е и А. В., Е. В., И. С. Ажгихин, г. Простагландины и их основные предшественники содержатся во всех млекопитающих животных организмах, как правило, в крайне малых количествах. Наибольшим содержанием простагландинов характеризуется семенная жидкость млекопитающих и человека. Так, в семенной жидкости человека общее содержание простагландинов составляет в среднем мкгмл и изменяется в зависимости от возраста и состояния здоровья. В семенной жидкости барана в среднем содержится мкгмл и простагландинов, а в семенной, жидкости лошади, собаки и кролика их определяется менее 0,5 мкгмл. В определяемых количествах простагландины содержатся в предстательной железе, в эндометрии матки и в яичниках животных.

Рекомендуемые диссертации данного раздела

28.06.2016

+ 100 бесплатных диссертаций

Дорогие друзья, в раздел "Бесплатные диссертации" добавлено 100 новых диссертаций. Желаем новых научных ...

15.02.2015

Добавлено 41611 диссертаций РГБ

В каталог сайта http://new-disser.ru добавлено новые диссертации РГБ 2013-2014 года. Желаем новых научных ...


Все новости

Время генерации: 0.190, запросов: 145