Фармакогностическое изучение крапивы коноплевой (Urtica cannabina L.)

• Автор: Пецуха, Виктория Сергеевна
• Шифр специальности: 15.00.02
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2009
• Место защиты: Улан-Удэ
• Количество страниц: 166 с. : 20 ил.

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Ботанико-географическая характеристика растений семейства 10 Крапивные (Urticaceae)
1.1.1. Общая характеристика семейства Urticaceae
1.1.2. Характеристика рода крапива Urtica
1.1.3. Морфологические признаки крапивы двудомной
1.1.4. Морфологические признаки крапивы коноплевой
1.1.5. Географическое распространение и места обитания видов крапивы
1.2. Современное состояние исследования крапивы двудомной
и крапивы коноплевой
1.2.1. Химический состав и применение крапивы двудомной
1.2.2. Химический состав и применение крапивы коноплевой
1.2.3. Растительные лекарственные средства, используемые для
лечения и профилактики геморрагических состояний
ВЫВОДЫ К ГЛАВЕ
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Характеристика объектов исследования
2.2. Методики исследования
2.2.1. Методики химического исследования биологически
активных веществ крапивы коноплевой
2.2.2. Хроматографический анализ фенольных соединений
2.2.3. Спектральные методы анализа
2.2.4 Методики морфологического и микроскопического исследования
2.2.5. Методики товароведческого исследования

2.2.6. Методы статистической обработки результатов исследований

ГЛАВА 3. ХИМИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ КРАПИВЫ
КОНОПЛЕВОЙ И КРАПИВЫ ДВУДОМНОЙ
3.1. Качественное исследование основных групп биологически активных веществ
3.2. Изучение состава флавоноидов и фенолкарбоновых кислот и
их идентификация
3.2.1. Препаративное выделение фенольных веществ
3.2.2. Идентификация флавоноидов и фенолкарбоновых кислот
с использованием УФ-спектроскопии
3.2.3. Исследование качественного состава фенольных
соединений методом ВЭЖХ
3.3. Изучение полисахаридного комплекса крапивы коноплевой
3.4. Определение аминокислотного состава крапивы коноплевой
3.5. Изучение элементного состава крапивы коноплевой
3.6. Количественное определение биологически активных
веществ в сырье крапивы коноплевой и крапивы двудомной
3.6.1. Определение количественного содержания
кислоты аскорбиновой
3.6.2. Определение количественного содержания
суммы каротиноидов
3.6.3. Определение количественного содержания витамина К
3.6.4. Определение количественного содержания
суммы дубильных веществ
3.6.5. Определение количественного содержания кумаринов
3.6.6. Определение количественного содержания суммы фенолкарбоновых кислот
3.6.7. Разработка методики количественного определения
суммы флавоноидов

ВЫВОДЫ К ГЛАВЕ

ГЛАВА 4. МОРФОЛОГО-АНАТОМИЧЕСКОЕ ИЗУЧЕНИЕ
КРАПИВЫ КОНОПЛЕВОЙ
4.1. Морфологические признаки крапивы коноплевой
4.2 Микроскопическое изучение крапивы коноплевой
ВЫВОДЫ К ГЛАВЕ
ГЛАВА 5 .СТАНДАРТИЗАЦИЯ СЫРЬЯ КРАПИВЫ КОНОПЛЕВОЙ 114 5 Л Определение подлинности сырья на основании
морфолого-анатомических признаков
5.2. Определение товароведческих показателей
доброкачественности сырья
5.3. Методики качественного обнаружения
биологически активных веществ
5.4. Методики количественного определения
биологически активных веществ
5.5. Определение сроков заготовки сырья
5.6. Установка срока годности сырья крапивы коноплевой
ВЫВОДЫ К ГЛАВЕ
ОБЩИЕ ВЫВОДЫ
СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
ПРИЛОЖЕНИЯ

Для идентификации кумаринов использовали метод ВЭЖХ (высоко эффективная жидкостная хроматография).
Для количественного определения кумаринов использовали фотоколориметрический метод [99].
Около 0,25 г. (т.н.) воздушно-сухого сырья, измельченного до размера частиц 1 мм, помещали в колбу вместимостью 100 мл. Навеску сырья заливали 50 мл 30% спирта этилового и кипятили с обратным холодильником 30 минут. Затем экстракт фильтровали, фильтр трижды промывали горячим 30% этиловым спиртом по 20 мл. К объединенным фильтратам добавляли 2 мл 10% уксуснокислого свинца и кипятили в течение 3 мин. Горячую смесь фильтровали, колбу и фильтр трижды промывали 30% спиртом этиловым по 20 мл. Затем к фильтрату добавляли 1 г однозамещенного фосфата натрия и снова кипятили в течение 3 мин. Горячий раствор фильтровали непосредственно в делительную воронку, промывали колбу и фильтр 30% спиртом этиловым трижды по 20 мл и охлаждали. Полученный водно-спиртовый раствор экстрагировали 3 раза порциями хлороформа по 25 мл. Объединенные порции промывали водой очищенной. Далее хлороформную вытяжку сушили безводным натрия сульфатом, и высушенный хлороформный экстракт фильтровали, а осадок натрия сульфата на фильтре промывали хлороформом трижды по 10 мл, растворитель удаляли полностью до сухого остатка. Полученный осадок растворяли в 24 мл 96% спирта этилового. К 12 мл этого раствора добавляли 20 мл 0,1 М раствора натра едкого и нагревали в течение 5 мин на водяной бане при температуре 70-85С0.
К охлажденному раствору добавляли 8 мл диазотированной сульфаниловой кислоты. Через 10 мин полученную смесь исследовали с помощью ФЭК-М на сине-зеленом фильтре в кювете толщиной 1 см.
Содержание суммы кумаринов определяли по формуле:
Х= С 40 100 100 . где т* (100 - IV)