Фармакокоррекция литием цитратом технологических стрессов в кролиководстве

• Автор: Кривошеев, Андрей Андреевич
• Шифр специальности: 06.02.03
• Научная степень: Кандидатская
• Год защиты: 2010
• Место защиты: Москва
• Количество страниц: 148 с. : ил.

СОКРАЩЕНИЯ, ИСПОЛЬЗОВАННЫЕ В ТЕКСТЕ
АлАТ (К.Ф.2.6.1.2.) — аланинаминотрансфераза Альб — альбумин
АсАТ (К.Ф.2.6.1.1.) — аспарататаминотрансфераза
АТФ — аденозинтрифосфат
АЭС — амтомно-эмиссионная спектрометрия
БЕЛ — общий белок
В/бр — внутрибрюшинно
В/м — внутримышечно
ВКО — весовой коэффициент органов
ВСЭ — ветеринарно-санитарная экспертиза
ТЕМ — гемоглобин
Глоб — глобулин
Гл — глюкоза
Диагр. — диаграмма
ДЕГ — дегустация мяса
Исх. — исходные данные
К — контрольная группа
Ккум — коэффициент кумуляции
КК (К.Ф.2.7.3.2.) — креатинкиназа
КТГ — категорийность тушек
ЛД50 — доза, вызывающая гибель 50 % животных
ЛДГ (К.Ф. 1.1.1.27) — лактатдегидрогеназа
ЛЕИ — лейкоциты
ЛЕЙ-МА —■ лейкограмма
ЛЖК — летучие жирные кислоты
ЛЦ — лития цитрат
МГАВМиБ — Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скрябина М.т. — масса тела О — опытная группа ОРТ — органолептическая оценка тушки Сут — сутки
ССП — среднесуточный прирост Прил. — приложение Рис. — рисунок
РЭЭ — расчет экономической эффективности Табл. — таблица
ТГ-ДТА — термогравиметрический дифференциальный термоанализ ХОЛ — холестерин
ЩФ (К.Ф 3.1.3.1.) — щелочная фосфатаза
Эр — эритроциты
Li — литий
Per os — перорально

ОГЛАВЛЕНИЕ
ВВЕДЕНИЕ
I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Стрессы животных и их влияние на гомеостаз
1.1.1. Понятие о стресс-реакции или общий адаптационный синдром
1.1.2. Классификация стресс-факторов
1.1.3. Общие принципы снижения потерь от стрессов
1.2. Фармакокоррекция стрессовых реакций
1.3. Фармакотоксикологические свойства препаратов лития
1.3.1. Гипотезы о механизме психотропного действия лития
1.3.2. Применение препаратов лития в медицине
1.3.3. Применение препаратов лития в ветеринарии
II. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Материалы и методы исследований
2.2. Результаты исследований
2.2.1. Изучение параметров токсичности ЛЦ
2.2.1.1. Параметры острой токсичности ЛЦу крыс стока СБ
2.2.1.2. Клиническая и патологоанатомическая картина острого отравления крыс ЛЦ
2.2.1.3. Влияние ЛЦ на гематологические показатели крови крыс
2.2.1.4. Определение субхронической токсичности ЛЦ для крыс при внутрижелудочном введении (по Лиму)
2.2.1.5. Определение подострой токсичности ЛЦ
2.2.1.6. Изучение хронической токсичности ЛЦ на крысах
2.3. Стресспротективное и адаптогенное действие ЛЦ
2.3.1. Изучение фармакодинамики ЛЦ с использованием тест-систем
2.3.1.1. Гексеналовый сон
2.3.1.2. Тест-система «Плавание» (ульцерогенез, вызванный стрессом)
2.3.1.3. Тест-система «Подвешивание крыс за кожную складку»

2.3.1.4. Тест-система «Подвешивание крыс на сетке»
2.3.1.5. Тест-система «Подвешивание крыс за хвост»
2.3.1.6. Тест-система «Переворачивание крыс в воздухе при свободном падении»
2.3.1.7. Тест-система «Норковая камера для крыс»
2.4. Производственные испытания ЛЦ на кроликах
2.4.1. Определение оптимальной противострессовой дозы ЛЦ
2.4.2. Стресспротективные свойства ЛЦ при технологических стрессах у крольчат
2.5. ВСЭ мяса кроликов
2.5.1. Органолептическая оценка мяса, бульона из мяса кроликов
2.5.2. Влияние терапевтической дозы ЛЦ на шкурку кроликов
2.5.3. Определение остаточных количеств лития
2.6. Обсуждение полученных результатов
2.7. ВЫВОДЫ
2.8. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
III. БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЙ СПИСОК :
IV. ПРИЛОЖЕНИЯ

бей, плавающих в бассейне, тонули к моменту окончания эксперимента. Такие особи в дальнейшем не учитывались при анализе интенсивности улыдерогенеза. После плавания крысы извлекались из бассейна, брался мазок крови (из хвостовой вены) для подсчета эозинофилов (по Дунгеру), после чего их немедленно умерщвляли эфиром и выделяли их желудки. В тот же день, сразу же после извлечения желудков, их рассекали по малой кривизне, промывали теплой водой и после растягивания на восковой подложке под бинокулярной лупой визуально оценивали состояние слизистой. При исследовании слизистой оболочки желудка учитывали следующие показатели повреждений: общую площадь точечных язвенных поражений, мм2 (площадь каждого принимается равной 1 мм2), общую площадь локальных язвенных повреждений, мм2. В случае линейных язв их измеряли по длине (в мм), а ширина принималась равной 1 мм.
Тест-система «Подвешивание за кожную складку». Раствор ЛЦ вводился крысам внутрижелудочно в дозах 70 мг/кг — 1 группа, 140 мг/кг — 2 группа, 210 мг/кг — 3 группа за 1 час до подвешивания. Контрольная группа животных препарат не получала. Затем крысы подвешивались за кожную складку в области спины и в таком положении оставались висеть на протяжении 24 часов. После этого животных снимали и усыпляли эфиром, затем вскрывали и подсчитывали количество язв в желудке. В опыте использовались 4 группы крыс по 10 голов в группе.
Тест-система «Подвешивание крыс на сетке». Эксперименты проводились на 40 крысах массой 240-280 г. В опыте использовались 4 группы крыс по 10 особей в группе. Препарат внутрижелудочно вводили опытным и контрольным животным по очереди. Крысы подопытных групп получали ЛЦ в дозах 70, 140, 210 мг/кг массы тела за 1 час до опыта, а животные контрольной — дистиллированную воду. После введения препаратов животное метилось индивидуально специальной краской и сажалось в специальный садок, откуда затем крыса помещалась на вертикальную сетку и плавно отпускалась, оставаясь висеть, зацепившись за сетку лапами. Продолжительность теста была ограничена 3 мин.